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猪蓝耳病免疫抗体监测问题探讨

2010-12-31 2页 doc 26KB 42阅读

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猪蓝耳病免疫抗体监测问题探讨猪蓝耳病免疫抗体监测问题探讨 金颜辉*1 黄盛兴2 黄雁1 洪英1 林芬1 杨得胜1 吴波平1 魏良宇1 (1 福建省动物疫病预防控制中心 350003;2 建瓯市小松镇畜牧兽医站 353111)   摘要:一组实验猪场应用PRRS灭活疫苗免疫猪场生猪,采集同一份猪血清ELISA试剂盒检测,测不出免疫抗体(0∕14),金标检出阳性率(9∕14)64.28%;另一组用进口减毒活苗免疫的同一份猪血清ELISA检出阳性数百分百(16∕16),金标检不出(0∕16)。另一实验猪场灭活苗两次免疫,金标检出阳性率(16∕21)76.19%...
猪蓝耳病免疫抗体监测问题探讨
猪蓝耳病免疫抗体监测问题探讨 金颜辉*1 黄盛兴2 黄雁1 洪英1 林芬1 杨得胜1 吴波平1 魏良宇1 (1 福建省动物疫病预防控制中心 350003;2 建瓯市小松镇畜牧兽医站 353111)   摘要:一组实验猪场应用PRRS灭活疫苗免疫猪场生猪,采集同一份猪血清ELISA试剂盒,测不出免疫抗体(0∕14),金标检出阳性率(9∕14)64.28%;另一组用进口减毒活苗免疫的同一份猪血清ELISA检出阳性数百分百(16∕16),金标检不出(0∕16)。另一实验猪场灭活苗两次免疫,金标检出阳性率(16∕21)76.19%,ELISA检不出;活疫苗两次免疫, ELISA检出阳性率(16∕21)76.19%,金标检不出。结论不同疫苗免疫效果,用不同检测,结果差异很大。   关键词:猪蓝耳病,抗体,监测   猪繁殖与呼吸综合征(Porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS)是由PRRSV引起的一种高度接触性的传染病,以引起母猪繁殖障碍、仔猪和育成猪呼吸道症状及高死亡率为主要特征。该病于1987年首次在北美发现[1],之后在世界范围内迅速传播,我国于1996年首次分离到该病毒[2],最近几年PRRSV也已成为我国重要的猪传染病病原之一。特别是2006年出现变异毒株后,对我国养猪业造成了更加严重的危害和经济损失[3]。   针对目前我国猪蓝耳病疫苗免疫后抗体水平监测中存在的一些问题,我们应用猪蓝耳病金标试纸条及进口ELISA试剂盒,对经猪繁殖与呼吸综合征灭活疫苗(NVDC-JXA1株)和进口减毒活疫苗免疫后采集的猪血清进行比对实验。   免疫程序为: 18日龄分两组免疫,灭活疫苗组免疫20天后采血清样检测,同一份血清检测结果:灭活苗免疫组ELISA检测血清抗体滴度检不出(0∕14),金标检出阳性率(9∕14)64.28%;进口减毒活疫苗用同样免疫程序,采血清样检测ELISA检出阳性率百分百(16∕16),金标检不出。另一猪场实验结果:免疫程序为 疫苗两次免疫间隔两周,二免后28天采血样检测,灭活疫苗免疫的ELISA检不出(0∕21),金标检出阳性率(16∕21)76.19%,活苗免疫的ELISA检出阳性率(16∕21)76.19%,金标检不出;金标检测中的3份阴性ELISA检测是阳性, ELISA检测中的3份阴性金标检测是阳性。 1 与方法 1.1 材料   选取两处健康猪场,经猪蓝耳病弱毒疫苗及灭活疫苗免疫后,采血,按常规方法分离血清,备检。 1.2 试剂盒   猪蓝耳病抗体检测试剂盒(Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus Antibody Test Kit)购自IDEXX公司;猪蓝耳病金标试纸条来自本中心福建省科技厅(2007)重大科技项目专题二“福建省畜禽重大疫病诊断及防治技术研究”课题组提供。 1.3 操作步骤 1.3.1 ELISA试剂盒:按试剂盒#说明#,应用猪蓝耳病抗体检测试剂盒对采集的猪血清进行抗体检测,步骤如下:血清用样品稀释液进行40倍稀释,浓缩洗液恢复到室温后混匀并用去离子水做10倍稀释。在试剂盒自带96孔板的C1、D1、C2、D2中加入100ul未稀释的阴性对照样品,在A1、B1、A2、B2孔中加入100ul未稀释的阳性对照样品,被检样品各加两孔,每孔100ul。室温孵育30min,甩去液体,每孔用洗液300ul清洗3-5次。每孔加入100ul酶标抗体,室温孵育30min。甩去液体,每孔用洗液300ul清洗3-5次。每孔加入100ul TMB底物溶液,室温孵育15min。加入100ul终止液并读取OD650nm。按试剂盒给定计算公式进行判定。 1.3.2 猪蓝耳病金标试纸检测   按说明书要求,于金标试纸条的加样孔中加入血清80-100ul,将试纸条平放于桌面上,在室温下静置15分钟后判定结果。 2 结果 2.1 两个试验猪场免疫程序为: 18日龄免疫灭活疫苗和死苗,20天后采血清样检测; 灭活疫苗和死苗两次免疫间隔两周,二免后28天采血样检测。 2.2 检测结果 3分析讨论 3.1 由于高致病性猪蓝耳病的细胞免疫及体液免疫机理不十分明朗;疫苗免疫后中和抗体、干扰素和细胞免疫之间的相关关系复杂。猪繁殖与呼吸综合征疫苗免疫后抗体监测使用的方法不同,得出的结论不同,甚至得出完全不同的结论, 导致对免疫保护效果的评估产生误判。从猪场疫苗使用临床效果上观察,用高致病猪蓝耳病NVDC-JXA1株试制的疫苗和弱毒疫苗都有较好的免疫保护作用。 3.2 猪繁殖与呼吸综合征的编码病毒ORF2—ORF7是病毒基因组的结构基因,是主要编码病毒的功能性蛋白。IDEXX ELISA试剂盒包被的是重组N蛋白。有实验表明,感染PRRSV后机体首先产生的是针对N蛋白的抗体,表达量达20-40%以上,且可持续半年以上[4-5]。灭活疫苗(NVDC-JXA1株)免疫后,重组N蛋白包被ELISA试剂盒对免疫抗体检出率之所以低,可能在于灭活疫苗中N蛋白激发的机体抗体不够。相反,弱毒疫苗免疫后,病毒复制过程中持续产生了大量的N蛋白,抗N蛋白抗体滴度高,所以上述ELISA的检出率很高。 参考文献:   [1] Keffaber K. Reproductive failure of unknown etiology. Am Assoc Swine Pract Newsl, 1989. 2:1-10.   [2] 郭宝清,陈章水,刘文兴.从疑似PRRS流产胎儿分离PRRSV的研究.中国畜禽传染病,1996a. (87)2:1-4.   [3] Tian K, Yu X, Zhao T, Feng Y, Cao Z, et al. (2007) Emergence of Fatal PRRSV Variants: Unparalleled Outbreaks of Atypical PRRS in China and Molecular Dissection of the Unique Hallmark. PLoS ONE 2(6): e526. doi:10.1371/journal.pone.0000526.   [4] Nelson EA, Christopher-Hennings JT and Benfield DA. Serum immune responses to the proteins of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus. J Vet Diagn Invest, 1994, 6:410-415.   [5] Nelson EA, Chritopher-Hennings J, Drew T, Wensvoort G, Collins JE and Benfield DA. Differentiation of U.S and European isolates of porcine reproductive and respiratory syndrome virus by monoclonal antibodies. J Clin Microbol, 1993, 31:3184-3189.
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