缓释复合酸化剂对断奶仔猪消化道酸度及肠道功能的影响

畜牧兽医学报　２００９，４０（１２）：１７４７１７５４ 犃犮狋犪犞犲狋犲狉犻狀犪狉犻犪犲狋犣狅狅狋犲犮犺狀犻犮犪犛犻狀犻犮犪 缓释复合酸化剂对断奶仔猪消化道酸度及 肠道功能的影响 晏家友，贾　刚，王康宁，王立志 （四川农业大学动物营养研究所 动物抗病营养教育部工程研究中心，雅安６２５０１４） 摘　要：本试验选用２８日龄断奶、平均体质量（７．００±０．１０）ｋｇ的长白猪（♂）×大白猪（♀）二元杂交仔猪６４头， 按单因素试验设计原则，研究在玉米－豆粕－膨化大豆型基础日粮中添加不同类型（包被与未包被）复合酸化剂对 断奶仔猪胃肠道酸度、生产性能、肠组织形态、消化酶活性、肠道微生物菌群及肠黏膜抗体ＳＩｇＡ的影响。试验设４ 个处理，每个处理４个重复，每个重复４头猪（公母各半），饲养试验时间为３５ｄ。结果表明，微胶囊型缓释复合酸 化剂可以极显著降低断奶仔猪胃和小肠ｐＨ（犘＜０．０１）；极显著提高空肠绒毛高度和隐窝深度的比值（犘＜０．０１）； 断奶前期，显著提高小肠蔗糖酶和乳糖酶活性（犘＜０．０５）；断奶后期，极显著提高仔猪盲肠和结肠中乳酸杆菌数量、 降低大肠杆菌数量（犘＜０．０１）；微胶囊型缓释复合酸化剂还有增加仔猪肠黏膜抗体ＳＩｇＡ分泌量的趋势（犘＞ ０．０５）。结果提示，在断奶仔猪日粮中添加微胶囊型缓释复合酸化剂，可以通过降低肠道ｐＨ，优化肠道微生物区 系，改善肠组织形态和功能，从而提高断奶仔猪肠道的消化力和适应性，并促进仔猪生长。 关键词：缓释复合酸化剂；断奶仔猪；消化道酸度；肠道功能 中图分类号：Ｓ８１６．７９　　　　文献标识码：Ａ　　　　文章编号：０３６６６９６４（２００９）１２１７４７０８ 收稿日期：２００８１２０５ 基金项目：四川省教育厅自然科学基金资助项目（２００３Ａ０２６） 作者简介：晏家友（１９８１），男，四川隆昌人，硕士生，主要从事单胃动物营养的研究，Ｅｍａｉｌ：ｙａｎｊｉａｙｏｕ０９０７＠ｙａｈｏｏ．ｃｏｍ．ｃｎ 通讯作者：贾　刚，Ｅｍａｉｌ：ｊｉａｇａｎｇ７００５１０＠１６３．ｃｏｍ 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犛犾狅狑狉犲犾犲犪狊犲犆狅犿狆狅狌狀犱犃犮犻犱犻犳犻犲狉狊狅狀犌犪狊狋狉狅犻狀狋犲狊狋犻狀犪犾狆犎 犪狀犱犐狀狋犲狊狋犻狀犪犾犉狌狀犮狋犻狅狀犻狀犠犲犪狀犻狀犵犘犻犵犾犲狋狊 ＹＡＮＪｉａｙｏｕ，ＪＩＡＧａｎｇ，ＷＡＮＧＫａｎｇｎｉｎｇ，ＷＡＮＧＬｉｚｈｉ （犈狀犵犻狀犲犲狉犻狀犵犚犲狊犲犪狉犮犺犆犲狀狋犲狉犳狅狉犃狀犻犿犪犾犇犻狊犲犪狊犲犚犲狊犻狊狋犪狀犮犲犖狌狋狉犻狋犻狅狀狅犳犕犻狀犻狊狋狉狔狅犳犈犱狌犮犪狋犻狅狀 狅犳犆犺犻狀犪，犃狀犻犿犪犾犖狌狋狉犻狋犻狅狀犐狀狊狋犻狋狌狋犲，犛犻犮犺狌犪狀犃犵狉犻犮狌犾狋狌狉犪犾犝狀犻狏犲狉狊犻狋狔，犢犪′犪狀６２５０１４，犆犺犻狀犪） 犃犫狊狋狉犪犮狋：Ｔｈｅｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｗａｓｃｏｎｄｕｃｔｅｄｔｏｓｔｕｄｙｔｈｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆｔｈｅａｄｄｉｔｉｏｎｏｆｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄａｎｄ ｎｏｎｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄｃｏｍｐｏｕｎｄａｃｉｄｉｆｉｅｒｓｉｎａｄｉｅｔｂａｓｅｄｏｎｃｏｒｎｓｏｙｂｅａｎｍｅａｌｅｘｔｒｕｄｅｄｓｏｙｂｅａｎｏｎ ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｐＨ，ｇｒｏｗｔｈｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，ｖｉｌｌｕｓｈｅｉｇｈｔａｎｄｃｒｙｐｔｄｅｐｔｈｏｆｊｅｊｕｎｕｍ，ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｄｉ ｇｅｓｔｉｖｅｅｎｚｙｍｅｓａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ，ｍｉｃｒｏｂｉａｌｐｏｐｕｌａｔｉｏｎａｎｄｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｕｃｏｓａｌｓｅｃｒｅｔｏｒｙｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ Ａ （ＳＩｇＡ）ｉｎ ｗｅａｎｉｎｇｐｉｇｌｅｔｓ．Ｓｉｘｔｙｆｏｕｒ２８ｄａｙｏｌｄ，ｃｒｏｓｓｂｒｅｄｐｉｇｌｅｔｓ （Ｌａｎｄｒａｃｅ×Ｌａｒｇｅ Ｗｈｉｔｅ），ｗｅｉｇｈｉｎｇａｎａｖｅｒａｇｅｏｆ（７．００±０．１０）ｋｇ，ｗｅｒｅｒａｎｄｏｍｌｙａｓｓｉｇｎｅｄｉｎｔｏｆｏｕｒｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ｗｉｔｈｆｏｕｒｒｅｐｌｉｃａｔｅｓａｎｄｆｏｕｒｐｉｇｌｅｔｓ（２ｍａｌｅａｎｄ２ｆｅｍａｌｅ）ｐｅｒｐｅｎ，ａｃｃｏｒｄｉｎｇｔｏｓｉｎｇｌｅｆａｃｔｏｒ ｄｅｓｉｇｎｐｒｉｎｃｉｐｌｅ．Ｔｈｅｆｅｅｄｉｎｇｔｒｉａｌｌａｓｔｅｄｆｏｒ３５ｄａｙｓ．Ｔｈｅｒｅｓｕｌｔｓｓｈｏｗｅｄｔｈａｔｍｉｃｒｏｃａｐｓｕｌｅｓｌｏｗ ｒｅｌｅａｓｅｃｏｍｐｏｕｎｄａｃｉｄｉｆｉｅｒｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｒｅｄｕｃｅｄｔｈｅｐＨｉｎｓｔｏｍａｃｈａｎｄｓｍａｌｌｉｎｔｅｓｔｉｎｅ（犘＜ ０．０１）．Ｉｎａｄｄｉｔｉｏｎ，ｍｉｃｒｏｃａｐｓｕｌｅｓｌｏｗｒｅｌｅａｓｅｃｏｍｐｏｕｎｄａｃｉｄｉｆｉｅｒｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｉｎｃｒｅａｓｅｄｔｈｅｒａｔｉｏ ｏｆｔｈｅｖｉｌｌｕｓｈｅｉｇｈｔｔｏｃｒｙｐｔｄｅｐｔｈｏｆｊｅｊｕｎｕｍ（犘＜０．０１），ａｎｄｓｔｉｍｕｌａｔｅｄｔｈｅｓｕｃｒａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙａｎｄ ｌａｃｔａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙｉｎｔｈｅｅａｒｌｙｗｅａｎｉｎｇｐｅｒｉｏｄ（犘＜０．０５）ａｓｗｅｌｌ．Ｄｕｒｉｎｇｔｈｅｌａｔｅｒｗｅａｎｉｎｇｐｅｒｉｏｄ， ｍｉｃｒｏｃａｐｓｕｌｅｃｏｍｐｏｕｎｄａｃｉｄｉｆｉｅｒｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｉｎｃｒｅａｓｅｄｔｈｅｃｏｕｎｔｓｏｆ犾犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊ａｎｄｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｔｈｅｃｏｕｎｔｓｏｆ犈狊犮犺犲狉犻犮犺犻犪犮狅犾犻ｉｎｔｈｅｃｅｃｕｍａｎｄｔｈｅｃｏｌｏｎ（犘＜０．０１）．Ｉｔｗａｓａｌｓｏｎｏｔｅｄｔｈａｔｔｈｅｒｅ 畜　牧　兽　医　学　报 ４０卷　 ｗａｓａｎｔｅｎｄｅｎｃｙｏｆｌｏｗｅｒｓｅｃｒｅｔｉｏｎｏｆｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｕｃｏｓａｌｓｅｃｒｅｔｏｒｙＩｇＡ（犘＞０．０５）．Ｔｈｅｓｅｒｅｓｕｌｔｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄｔｈａｔｔｈｅｍｉｃｒｏｃａｐｓｕｌｅｓｌｏｗｒｅｌｅａｓｅｃｏｍｐｏｕｎｄａｃｉｄｉｆｉｅｒｓｃｏｕｌｄｏｐｔｉｍｉｚｅｔｈｅｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｉ ｃｒｏｆｌｏｒａａｎｄｉｍｐｒｏｖｅｔｈｅｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙａｎｄｆｕｎｃｔｉｏｎｂｙｒｅｄｕｃｉｎｇｔｈｅｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｐＨ， ｓｏａｓｔｏｅｎｈａｎｃｅｔｈｅｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｄｉｇｅｓｔｉｂｉｌｉｔｙａｎｄａｄａｐｔａｔｉｏｎ，ａｎｄｃｏｎｓｅｑｕｅｎｔｌｙｉｍｐｒｏｖｅｔｈｅｇｒｏｗｔｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅｉｎｗｅａｎｉｎｇｐｉｇｌｅｔｓ． 犓犲狔狑狅狉犱狊：ｓｌｏｗｒｅｌｅａｓｅｃｏｍｐｏｕｎｄａｃｉｄｉｆｉｅｒｓ；ｗｅａｎｉｎｇｐｉｇｌｅｔｓ；ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｐＨ；ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｆｕｎｃｔｉｏｎ 　　大量研究表明，仔猪断奶应激综合征可能与断 奶后胃肠道ｐＨ升高有关［１２］。近年来，国内外都出 现了不少通过在断奶仔猪日粮中添加酸化剂解决仔 猪断奶应激综合征的相关报道，但这些报道中所涉 及的酸化剂大部分没有经过保护处理，容易在胃中 快速释放Ｈ＋，而不能到达小肠和大肠，不能使肠道 适应（ｉｎｔｅｓｔｉｎｅａｄａｐｔａｔｉｏｎ）尽快完成［３４］。研究发 现，断奶仔猪肠道ｐＨ偏高，不但会影响小肠消化酶 的活性，还会引发病原菌的增殖，导致仔猪出现营养 性或病原性腹泻［５６］。因此，有学者提出将酸化剂进 行包被处理，从而使其酸化作用可以延伸到肠道。 目前，国内有关包被酸化剂对断奶仔猪的作用效果， 尚未见研究报道。因此本试验拟研究经过脂肪酸包 被的微胶囊型缓释复合酸化剂对断奶仔猪生产性能 和肠道功能的影响，并为实际生产中更有效地利用 酸化剂调节仔猪断奶后消化道适应能力和肠道健康 提供依据。 １　材料与方法 １．１　试验设计 试验选用２８日龄断奶、平均体质量为（７．００± ０．１０）ｋｇ的长白猪（♂）×大白猪（♀）二元杂交仔 猪６４头，按单因素试验设计原则，设４个处理，每个 处理４个重复，每个重复４头猪（公母各半），在预饲 ３ｄ后，进行５周试验。仔猪按断奶前期（１～３周） 和后期（４～５周）２个阶段分别饲喂不同日粮，试验 设计见表１。 表１　试验设计 犜犪犫犾犲１　犜犺犲犱犲狊犻犵狀狅犳狋犺犲狋狉犻犪犾 处理 Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ １～３周 １－３ｗｅｅｋｓ ４～５周 ４－５ｗｅｅｋｓ 对照组１Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ１ 基础日粮 基础日粮 对照组２Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ２ 基础日粮＋０．１０％对照酸 基础日粮＋０．０５％对照酸 试验组１Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ１ 基础日粮＋０．１０％试验酸 基础日粮＋０．０５％试验酸 试验组２Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ２ 基础日粮＋０．０５％试验酸 基础日粮＋０．０３％试验酸 １．２　试验材料 试验组用的酸化剂属微胶囊型复合酸化剂，主 要成分包括延胡索酸、乳酸、柠檬酸和苹果酸等，并 经过脂肪酸（Ｃ１２Ｃ２２）包被，具有缓释、稳定、抗腐蚀、 不吸湿及良好流动性和混合性等特点；对照组２所 用的酸化剂为自配复合酸化剂，主要成分和试验组 所用的酸化剂相同，但未经包被处理。 １．３　试验日粮 试验选用玉米－豆粕－膨化大豆型基础日粮， 参照ＮＲＣ（１９９８）猪的营养需要、中国猪饲养标准 （２００４）、中国饲料成分及营养价值表（２００５），分仔猪 断奶后１～３周和４～５周两个阶段进行日粮配制， 日粮配方见表２。 １．４　饲养管理 试验在四川农业大学动物营养研究所试验场仔 猪保育舍进行。保育舍采用漏缝地板保育设备，舍 温控制在２５～２８℃，相对湿度控制在５０％～７０％。 仔猪定时饲喂，饲喂时间分别在每天的０８：００、 １２：００、１６：００和２０：００。饲料采用粉料拌湿的方式 饲喂，且每次喂料量以料槽中有少量余料为宜。仔 猪在断奶后最初３ｄ内限量饲喂，３ｄ后自由采食， 试验期间自由饮水。每日清扫保育舍１次，每隔４ｄ 对保育舍进行喷雾消毒１次。 ８４７１ 　１２期 晏家友等：缓释复合酸化剂对断奶仔猪消化道酸度及肠道功能的影响 表２　日粮组成和营养水平（风干基础） 犜犪犫犾犲２　犆狅犿狆狅狊犻狋犻狅狀犪狀犱狀狌狋狉犻犲狀狋犾犲狏犲犾狊狅犳犱犻犲狋狊（犪犻狉犱狉狔 犫犪狊犻狊） ％ 原料 Ｉｎｇｒｅｄｉｅｎｔ １～３周 １３ｗｅｅｋｓ ４～５周 ４５ｗｅｅｋｓ 玉米Ｃｏｒｎ 豆粕（ＣＰ４４％）Ｓｏｙｂｅａｎｍｅａｌ（ｓｏｌ．） 膨化大豆Ｅｘｔｒｕｄｅｄｓｏｙｂｅａｎ 鱼粉（国产）Ｆｉｓｈｍｅａｌ 小麦麸 Ｗｈｅａｔｂｒａｎ 大豆油Ｓｏｙｂｅａｎｏｉｌ Ｌ赖氨酸盐酸盐ＬＬｙｓＨｃｌ ＤＬ蛋氨酸ＤＬＭｅｔ 苏氨酸Ｔｈｒ 石粉Ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ 磷酸氢钙（２个结晶水）ＣａＨＰＯ４·２Ｈ２Ｏ 氯化胆碱（纯度５０％）Ｃｈｏｌｉｎｅｃｈｌｏｒｉｄｅ 维生素预混料Ｖｉｔａｍｉｎｐｒｅｍｉｘ１） 食盐Ｓａｌｔ 微量元素预混料Ｔｒａｃｅｍｉｎｅｒａｌｐｒｅｍｉｘ２） 饲用抗生素Ｆｅｅｄａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ 酸化剂Ａｃｉｄｉｆｉｅｒｓ３） 合计Ｔｏｔａｌ ６０．０１ １２．００ １５．００ ６．００ ２．５０ １．５０ ０．３０ ０．１０ ０．０７ ０．９５ ０．５０ ０．０６ ０．０５ ０．３０ ０．５０ ０．０６ ０．１０ １００．００ ６３．５０ １４．００ １１．００ ３．００ ３．００ ２．００ ０．３８ ０．０８ ０．０７ ０．９５ ０．９５ ０．０６ ０．０５ ０．３０ ０．５０ ０．０６ ０．１０ １００．００ 营养指标 Ｎｕｔｒｉｅｎｔｉｔｅｍ 营养水平 Ｎｕｔｒｉｅｎｔｌｅｖｅｌｓ 消化能／（ＭＪ·ｋｇ１）ＤＥ 粗蛋白ＣＰ 钙Ｃａ 有效磷ＡＰ 可消化赖氨酸ＤＬｙｓ 可消化蛋氨酸ＤＭｅｔ 可消化色氨酸ＤＴｒｐ 可消化苏氨酸ＤＴｈｒ 可消化异亮氨酸ＤＩｌｅ １４．２３ ２０．３３ ０．８１ ０．４１ １．１９ ０．４２ ０．２２ ０．７４ ０．６７ １４．１８ １９．０５ ０．８１ ０．４０ １．１０ ０．３７ ０．２０ ０．６９ ０．６０ １）．１～３周每千克饲料含ＶＡ２２００ＩＵ；ＶＤ３２２０ＩＵ；ＶＥ１６．００ＩＵ； ＶＫ３０．５０ｍｇ；ＶＢ１１．５０ｍｇ；ＶＢ２４．００ｍｇ；ＶＢ６２．００ｍｇ；ＶＢ１２２０．００ μｇ；烟酸２０．００ｍｇ；泛酸钙１２．００ｍｇ；叶酸０．３０ｍｇ；生物素０．０８ ｍｇ；４～５周每千克饲料含ＶＡ１８００ＩＵ；ＶＤ３２００ＩＵ；ＶＥ１１．００ＩＵ； ＶＫ３０．５０ｍｇ；ＶＢ１１．００ｍｇ；ＶＢ２３．５０ｍｇ；ＶＢ６１．５０ｍｇ；ＶＢ１２１７．５０ μｇ；烟酸１５．００ｍｇ；泛酸钙１０．００ｍｇ；叶酸０．３０ｍｇ；生物素０．０５ ｍｇ。２）．每千克饲料中含Ｆｅ１０５ｍｇ；Ｃｕ６．００ｍｇ；Ｍｎ４．００ｍｇ；Ｚｎ １１０ｍｇ；Ｉ０．１４ｍｇ；Ｓｅ０．３０ｍｇ。３）．酸化剂为各处理组所用的复合酸 化剂，不足部分由玉米补充 １）．Ｔｈｅｓｔａｇｅｏｆ１－３ｗｅｅｋｓ，ｐｒｏｖｉｄｅｄｐｅｒｋｇｏｆｄｉｅｔＶＡ２２００ＩＵ； ＶＤ３２２０ＩＵ；ＶＥ１６．００ＩＵ；ＶＫ３０．５０ｍｇ；ＶＢ１１．５０ｍｇ；ＶＢ２４．００ ｍｇ；ＶＢ６２．００ｍｇ；ＶＢ１２２０．００μｇ；Ｎｉａｃｉｎ２０．００ｍｇ；Ｃａｌｃｉｕｍｐａｎ ｔｏｔｈｅｎｉｃ１２．００ｍｇ；Ｆｏｌｉｃａｃｉｄ０．３０ｍｇ；Ｂｉｏｔｉｎ０．０８ｍｇ．Ｔｈｅｓｔａｇｅ ｏｆ４－５ｗｅｅｋｓ，ｐｒｏｖｉｄｅｄｐｅｒｋｇｏｆｄｉｅｔＶＡ１８００ＩＵ；ＶＤ３２００ＩＵ； ＶＥ１１．００ＩＵ；ＶＫ３０．５０ｍｇ；ＶＢ１１．００ｍｇ；ＶＢ２３．５０ｍｇ；ＶＢ６ １．５０ｍｇ；ＶＢ１２１７．５０μｇ；Ｎｉａｃｉｎ１５．００ｍｇ；Ｃａｌｃｉｕｍｐａｎｔｏｔｈｅｎｉｃ １０．００ｍｇ；Ｆｏｌｉｃａｃｉｄ０．３０ｍｇ；Ｂｉｏｔｉｎ０．０５ｍｇ．２）．Ｐｒｏｖｉｄｅｄｐｅｒｋｇ ｏｆｄｉｅｔＦｅ１０５ｍｇ；Ｃｕ６．００ｍｇ；Ｍｎ４．００ｍｇ；Ｚｎ１１０ｍｇ；Ｉ０．１４ ｍｇ；Ｓｅ０．３０ｍｇ．３）．Ｔｈｅａｃｉｄｉｆｉｅｒｓｉｓｃｏｍｐｏｕｎｄａｃｉｄｉｆｉｅｒｓｕｓｅｄｂｙ ｅａｃｈｔｒｅａｔｍｅｎｔａｎｄｔｈｅｃｏｒｎｗａｓｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｅｄ １．５　屠宰与样品采集 在分别饲养仔猪２和５周后，先晨饲１ｈ，再分 别于每个重复选取１头中等体况的仔猪进行屠宰。 仔猪采用颈静脉放血的方法处死，然后立即打开腹 腔，迅速结扎幽门瓣、回盲瓣以及其他肠段分界处。 分离出胃、十二指肠、空肠和回肠，并取其内容物，于 －２０℃冷冻保存，用于测定ｐＨ和酶活。截取一段 空肠肠管，并用１０％甲醛固定，于４℃冷冻保存，以 制作组织切片。剖开十二指肠、空肠和回肠，用载玻 片分别刮取各肠段内黏液，于－７０℃冷冻保存，以 检测肠黏膜抗体。无菌操作取部分盲肠和结肠内容 物，于４℃冷冻保存，并迅速送往实验室培养乳酸杆 菌和大肠杆菌。 １．６　测定指标与测定方法 １．６．１　日增体质量、采食量、料重比　　试验开始和 结束时，分别对每个仔猪进行空腹称重。每圈的 投料量、余料量和损耗量。根据平均日增体质量 （ＡＤＧ）和平均日采食量（ＡＤＦＩ）计算料重比（Ｆ／Ｇ）。 １．６．２　胃肠道内容物ｐＨ　　胃肠道内容物ｐＨ采 用上海精密仪器仪表有限公司生产的ＰＨＳ３Ｃ型精 密酸度计（精确度±０．０１）进行测定。 １．６．３　肠组织形态　　空肠样品经过固定、修整、脱 水、包埋、切片（５μｍ）、染色（Ｈ．Ｅ．）后制作成组织切片， 再用日本Ｎｉｋｏｎ荧光生物显微镜，结合爱普图像处理 分析软件４．０测定绒毛高度（ＶＨ）、隐窝深度（ＣＤ），并 计算绒毛高度与隐窝深度的比值（ＶＨ／ＣＤ）。 １．６．４　消化酶活性　　小肠蔗糖酶和乳糖酶粗酶 液制备：称取一定量内容物（０．２～１．０ｇ），按质量体 积比１９（ｇ·ｍＬ１）加入匀浆介质，进行超声粉碎 匀浆。然后将匀浆液用低温低速离心机２０００ ｒ·ｍｉｎ１离心１０ｍｉｎ，取上清液，即得１０％粗酶液。 酶活采用南京建成生物工程研究所生产的试剂盒， 结合国产７２１可见光分光光度计进行测定。 １．６．５　肠道微生物菌群　　盲肠和结肠微生物采 用平板涂布法计数：先用灭菌生理盐水将样品从 １０１到１０７做倍比稀释，每个样品选３个稀释度（乳 酸杆菌选１０５、１０６、１０７；大肠杆菌选１０４、１０５、 １０６），每个稀释度做３个重复，然后用微量进样器 从高倍稀释开始，分别取０．０２ｍＬ稀释液滴入各选 择培养基（乳酸杆菌用 ＭＲＳ培养基；大肠杆菌用 ＥＭＢ培养基）。滴种后用曲玻棒推匀，乳酸杆菌 ３７℃厌氧培养４８ｈ、大肠杆菌３７℃需氧培养２４ｈ 后，分别计数。结果以ＣＦＵ·ｇ１（每克肠道内容物 ９４７１ 畜　牧　兽　医　学　报 ４０卷　 中含菌落总数）表示。 １．６．６　肠黏膜抗体ＳＩｇＡ　　肠黏膜抗体ＳＩｇＡ粗 提：按１份样品加入３份ＰＢＳ（ｐＨ７．２、浓度０．０１ ｍｏｌ·Ｌ１）混合，４ ℃ 处理 ２４ｈ，然后 １００００ ｒ·ｍｉｎ１离心５ｍｉｎ，取上清液［７］。肠黏膜抗体ＳＩ ｇＡ采用南京建成生物工程研究所生产的免疫透射 比浊试剂盒进行测定。 １．７　数据处理 试验数据经过Ｅｘｃｅｌ处理后，利用ＳＰＳＳ１１．５ 统计软件进行方差分析，差异显著时采用 Ｄｕｎｃａｎ 氏方法进行多重比较，试验结果以平均值±标准差 表示。 ２　结　果 ２．１　断奶仔猪生产性能 断奶仔猪生产性能见表３。由表３可以看出： 在整个试验期，试验组１仔猪与对照组１相比，可以 提高平均日增体质量１２．７５％，降低料重比５．２０％ （犘＜０．０５）；试验组２仔猪与对照组１相比，可以提 高平均日增体质量７．１９％，降低料重比２．３０％ （犘＞０．０５）；而对照组２仔猪与对照组１相比，平均 日增体质量和饲料利用率反而极显著降低（犘＜ ０．０１）。但在整个试验期，各处理组仔猪之间平均日 采食量差异均不显著（犘＞０．０５）。 表３　不同类型复合酸化剂对断奶仔猪生产性能的影响 犜犪犫犾犲３　犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋狋狔狆犲狊狅犳犮狅犿狆狅狌狀犱犪犮犻犱犻犳犻犲狉狊狅狀犵狉狅狑狋犺狆犲狉犳狅狉犿犪狀犮犲犻狀狑犲犪狀犻狀犵狆犻犵犾犲狋狊 项目 Ｉｔｅｍ 对照组１ Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ１ 对照组２ Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ２ 试验组１ Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ１ 试验组２ Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ２ 初始体质量／ｋｇＩｎｉｔｉａｌｗｅｉｇｈｔ ６．９８９±０．００９ ７．０２８±０．００８ ７．００１±０．０１１ ６．９７１±０．００９ 结束体质量／ｋｇＦｉｎａｌｗｅｉｇｈｔ １７．６９９±０．７００ １５．９１８±０．９１８Ａａ １９．０７６±０．９２４Ｂ １８．４５１±１．２８６ｂ １～５周平均日增体质量／ｋｇＡＤＧ ０．３０６±０．００７Ａａ ０．２５４±０．０１４Ｂ ０．３４５±０．０１７Ａｂ ０．３２８±０．００８Ａａ １～５周平均日采食量／ｋｇＡＤＦＩ ０．４６５±０．０５６ ０．４４２±０．０１２ ０．４９７±０．０１２ ０．４８７±０．００６ １～５周料重比Ｆ／Ｇ １．５２０±０．１９５Ａａ １．７４０±０．０４１Ｂ １．４４１±０．０１１Ａｂ １．４８５±０．００８Ａａ 同行数据肩注相同字母表示差异不显著（犘＞０．０５）；同行数据肩注不同小写字母表示差异显著（犘＜０．０５）；同行数据肩注不同 大写字母表示差异极显著（犘＜０．０１），下同 Ｉｎｔｈｅｓａｍｅｒｏｗ，ｖａｌｕｅｓｗｉｔｈｔｈｅｓａｍｅｌｅｔｔｅｒｓｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔｉｎｄｉｃａｔｅｎｏｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ（犘＞０．０５），ｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒｅｎｔｓｍａｌｌｌｅｔｔｅｒｓｕｐｅｒ ｓｃｒｉｐｔｓｉｎｄｉｃａｔｅｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ（犘＜０．０５），ｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒｅｎｔｃａｐｉｔａｌｓｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔｓｉｎｄｉｃａｔｅｅｘｔｒｅｍｅｌｙｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ（犘＜ ０．０１），ｔｈｅｓａｍｅａｓｂｅｌｏｗ ２．２　断奶仔猪胃肠道内容物狆犎 断奶仔猪胃肠道内容物ｐＨ见表４。由表４可 以看出：在断奶２和５周后，试验组１和试验组２仔 猪肠道内容物ｐＨ均极显著低于对照组１和对照组 ２（犘＜０．０１）；而对照组２仔猪在断奶２周后，只有 胃和十二指肠内容物ｐＨ 才极显著低于对照组１ （犘＜０．０１）。 表４　不同类型复合酸化剂对断奶仔猪胃肠道内容物狆犎的影响 犜犪犫犾犲４　犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋狋狔狆犲狊狅犳犮狅犿狆狅狌狀犱犪犮犻犱犻犳犻犲狉狊狅狀犵犪狊狋狉狅犻狀狋犲狊狋犻狀犪犾狆犎犻狀狑犲犪狀犻狀犵狆犻犵犾犲狋狊 项目 Ｉｔｅｍ 对照组１ Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ１ 对照组２ Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ２ 试验组１ Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ１ 试验组２ Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ２ 第２周２ｗｅｅｋ 胃Ｓｔｏｍａｃｈ ４．１７±０．０２Ａ ３．５９±０．２１Ｂａ ３．３７±０．０５Ｂｂ ３．４６±０．０１Ｂｂ 十二指肠Ｄｕｏｄｅｎｕｍ 空肠Ｊｅｊｕｎｕｍ ５．０２±０．０４Ａ ６．１７±０．０２Ａ ４．８１±０．０６Ｂａ ６．１０±０．０４Ａ ４．６８±０．０４Ｂｂ ５．８７±０．０３Ｂａ ４．７９±０．０１Ｂａ ５．９５±０．０４Ｂｂ 回肠Ｉｌｅｕｍ ６．２５±０．０７Ａ ６．２４±０．０６Ａ ６．０２±０．０２Ｂａ ６．１１±０．０３Ｂｂ 第５周５ｗｅｅｋ 胃Ｓｔｏｍａｃｈ 十二指肠Ｄｕｏｄｅｎｕｍ ４．５０±０．０４Ａ ５．５５±０．０３Ａ ４．４８±０．０４Ａ ５．５７±０．０２Ａ ３．５０±０．０９Ｂ ４．８９±０．０６Ｂａ ３．６０±０．０４Ｂ ５．０５±０．０１Ｂｂ 空肠Ｊｅｊｕｎｕｍ ６．５０±０．０３Ａ ６．５７±０．０１Ａ ６．０８±０．０８Ｂａ ６．２０±０．０１Ｂｂ 回肠Ｉｌｅｕｍ ６．６３±０．０４Ａ ６．６８±０．０４Ａ ６．１５±０．０４Ｂａ ６．２５±０．０１Ｂｂ ０５７１ 　１２期 晏家友等：缓释复合酸化剂对断奶仔猪消化道酸度及肠道功能的影响 ２．３　断奶仔猪肠组织形态 断奶仔猪空肠绒毛高度和隐窝深度见表５。由 表５可以看出：在断奶２和５周后，试验组１仔猪与 对照组１相比，可以分别增加绒毛高度９．４８％、 １３．７７％，降低隐窝深度１９．５０％、２２．２２％，提高绒 毛高度与隐窝深度比值３５．７９％、４６．３１％（犘＜ ０．０１）；试验组２仔猪与对照组１相比，可以分别增 加绒 毛 高 度 ４．４４％、７．２９％，降 低 隐 窝 深 度 １２．２９％、１４．３４％，提高绒毛高度与隐窝深度比值 １８．９４％、２４．８３％（犘＜０．０１）。 表５　不同类型复合酸化剂对断奶仔猪空肠绒毛高度和隐窝深度的影响 犜犪犫犾犲５　犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋狋狔狆犲狊狅犳犮狅犿狆狅狌狀犱犪犮犻犱犻犳犻犲狉狊狅狀犞犎犪狀犱犆犇狅犳犼犲犼狌狀狌犿犻狀狑犲犪狀犻狀犵狆犻犵犾犲狋狊 项目 Ｉｔｅｍ 对照组１ Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ１ 对照组２ Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ２ 试验组１ Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ１ 试验组２ Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ２ 第２周２ｗｅｅｋ 绒毛高度／μｍＶＨ ２７９．４４±３７．０２ａ ２７４．２４±１１．７１ａ ３０５．９２±２６．７２ｂ ２９１．８６±１８．０９ｂ 隐窝深度／μｍＣＤ １４７．３６±１４．７２ａ １５２．３５±１０．３６ａ １１８．６３±１３．３３ｂ １２９．２５±１９．５５ｂ ＶＨ／ＣＤ １．９０±０．２１Ａａ １．８０±０．１５Ａｂ ２．５８±０．３５Ｂａ ２．２６±０．２３Ｂｂ 第５周５ｗｅｅｋ 绒毛高度／μｍＶＨ ２４７．８１±２８．３８Ａａ ２３０．６６±１７．８４Ａｂ ２８１．９４±１２．４７Ｂａ ２６５．８８±１０．４１Ｂｂ 隐窝深度／μｍＣＤ １６６．４６±３１．２２Ａａ １７８．２０±２６．５４Ａｂ １２９．４７±１９．６１Ｂａ １４２．５９±２１．９８Ｂｂ ＶＨ／ＣＤ １．４９±０．１１Ａａ １．２９±０．２０Ａｂ ２．１８±０．２４Ｂａ １．８６±０．１３Ｂｂ ２．４　断奶仔猪小肠消化酶活性 断奶仔猪小肠内容物中蔗糖酶和乳糖酶活性见 表６。由表６可以看出：在断奶２和５周后，试验组 １仔猪小肠蔗糖酶活性分别是对照组１的１．１４倍、 １．１６倍，乳糖酶活性分别是对照组１的１．１０倍、 １．２８倍；试验组２仔猪小肠蔗糖酶活性分别是对照 组１的１．１０倍、１．１２倍，乳糖酶活性分别是对照组 １的１．０７倍、１．０８倍。 表６　不同类型复合酸化剂对断奶仔猪小肠酶活性的影响 犜犪犫犾犲６　犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋狋狔狆犲狊狅犳犮狅犿狆狅狌狀犱犪犮犻犱犻犳犻犲狉狊狅狀犻狀狋犲狊狋犻狀犪犾犲狀狕狔犿犲狊犪犮狋犻狏犻狋犻犲狊犻狀狑犲犪狀犻狀犵狆犻犵犾犲狋狊 项目 Ｉｔｅｍ 对照组１ Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ１ 对照组２ Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ２ 试验组１ Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ１ 试验组２ Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ２ 第２周酶活２ｗｅｅｋ，Ｅｎｚｙｍｅａｃｔｉｖｉｔｙ 蔗糖酶／（Ｕ·ｍｇ１ｐｒｏｔｅｉｎ）Ｓｕｃｒａｓｅ ３９１．４４±３７．０２ａ ３８２．７５±５１．７１ａ ４４７．９２±５６．７２ｂ ４２８．８６±４８．０９ｂ 乳糖酶／（Ｕ·ｍｇ１ｐｒｏｔｅｉｎ）Ｌａｃｔａｓｅ ４３６．３６±３１．７２ａ ４１３．３５±５６．３６ａ ４８１．６３±３９．３３ｂ ４６８．５９±１９．５５ｂ 第５周酶活５ｗｅｅｋ，Ｅｎｚｙｍｅａｃｔｉｖｉｔｙ 蔗糖酶／（Ｕ·ｍｇ１ｐｒｏｔｅｉｎ）Ｓｕｃｒａｓｅ １８７２．８１±９８．３８Ａａ １７７６．６６±１０７．８４Ａｂ ２１６５．９４±９２．４７Ｂａ ２０８８．９３±１００．４１Ｂｂ 乳糖酶／（Ｕ·ｍｇ１ｐｒｏｔｅｉｎ）Ｌａｃｔａｓｅ １４０．４６±２４．２２ａ １２２．２０±３０．５４ａ １７９．４７±２８．６１ｂ １５２．３６±２１．９８ ２．５　断奶仔猪肠道微生物菌群 断奶仔猪盲肠和结肠中乳酸杆菌和大肠杆菌数 量见表７。由表７可以看出：在断奶２周后，试验组 １仔猪盲肠中乳酸杆菌数量显著高于对照组１（犘＜ ０．０５）；在断奶５周后，试验组１、试验组２仔猪盲肠 和结肠中乳酸杆菌数量都极显著高于对照组１，且 大肠杆菌数量都极显著低于对照组１（犘＜０．０１）。 ２．６　断奶仔猪肠黏膜抗体犛犐犵犃 断奶仔猪肠黏膜抗体ＳＩｇＡ分泌量见图１和图 ２。由图１和图２可以看出：在断奶２和５周后，试 验组１和试验组２仔猪十二指肠、空肠和回肠黏膜 抗体ＳＩｇＡ分泌量都高于对照组１，但差异不显著 （犘＞０．０５）；在断奶５周后，对照组２仔猪肠黏膜抗 体ＳＩｇＡ分泌量反而低于对照组１（犘＞０．０５）。 ３　讨　论 ３．１　微胶囊型缓释复合酸化剂对断奶仔猪消化道 酸度及生产性能的影响 　　仔猪消化道内的适宜酸度是维持消化系统正常 功能不可或缺的重要因素。早期断奶仔猪由于消化 系统发育尚不成熟，神经和内分泌调控机制还未完 全建立，因而在断奶后３～４周内，仔猪消化道内的 ｐＨ反而高于断奶前的水平［８９］。仔猪肠道不健康 常导致以腹泻为特征的断奶应激综合征高发，并严 １５７１ 畜　牧　兽　医　学　报 ４０卷　 　　　　　表７　不同类型复合酸化剂对断奶仔猪肠道微生物菌群的影响 犜犪犫犾犲７　犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋狋狔狆犲狊狅犳犮狅犿狆狅狌狀犱犪犮犻犱犻犳犻犲狉狊狅狀犿犻犮狉狅犫犻犪犾狆狅狆狌犾犪狋犻狅狀犻狀狑犲犪狀犻狀犵狆犻犵犾犲狋狊 项目 Ｉｔｅｍ 对照组１ Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ１ 对照组２ Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ２ 试验组１ Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ１ 试验组２ Ｔｒｉａｌｇｒｏｕｐ２ 第２周乳酸杆菌２ｗｅｅｋ，犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊 盲肠／（１０９ＣＦＵ·ｇ１）Ｃｅｃｕｍ １．６５±０．０３ａ １．３４±０．４７ａ ３．９３±１．０２ｂ ３．１２±１．２５ 结肠／（１０９ＣＦＵ·ｇ１）Ｃｏｌｏｎ ２．５１±０．６９ １．９４±０．４３ａ ４．２７±０．８１ｂ ４．２１±０．７６ｂ 第２周大肠杆菌２ｗｅｅｋ，犈狊犮犺犲狉犻犮犺犻犪犮狅犾犻 盲肠／（１０７ＣＦＵ·ｇ１）Ｃｅｃｕｍ １．７９±０．０８ ２．８５±０．７１ａ ０．９５±０．０７ｂ １．３９±０．６２ｂ 结肠／（１０７ＣＦＵ·ｇ１）Ｃｏｌｏｎ １．４０±０．１４ａ ２．８２±０．７４ａ ０．４８±０．２１ｂ ０．５６±０．３２ｂ 第５周乳酸杆菌５ｗｅｅｋ，犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊 盲肠／（１０９ＣＦＵ·ｇ１）Ｃｅｃｕｍ １．２０±０．０３Ａ ０．９８±０．０１Ａ ２．２５±０．１４Ｂａ １．９４±０．２１Ｂｂ 结肠／（１０９ＣＦＵ·ｇ１）Ｃｏｌｏｎ １．３４±０．０３Ａ １．０９±０．０１Ａ ２．８４±０．０６Ｂａ ２．２７±０．０５Ｂｂ 第５周大肠杆菌５ｗｅｅｋ，犈狊犮犺犲狉犻犮犺犻犪犮狅犾犻 盲肠／（１０６ＣＦＵ·ｇ１）Ｃｅｃｕｍ ５．８９±０．０４Ａ ６．１４±０．０７Ａ ２．３１±０．０４Ｂａ ２．９４±０．０３Ｂｂ 结肠／（１０６ＣＦＵ·ｇ１）Ｃｏｌｏｎ ３．１５±０．１３Ａａ ３．７７±０．０３Ａｂ １．０４±０．０２Ｂ １．１４±０．０２Ｂ 图１　第２周肠黏膜抗体犛犐犵犃分泌量 犉犻犵１　犐狀狋犲狊狋犻狀犪犾犿狌犮狅狊犪犾狊犲犮狉犲狋狅狉狔犐犵犃犻狀２狑犲犲犽 图２　第５周肠黏膜抗体犛犐犵犃分泌量 犉犻犵２　犐狀狋犲狊狋犻狀犪犾犿狌犮狅狊犪犾狊犲犮狉犲狋狅狉狔犐犵犃犻狀５狑犲犲犽 重制约仔猪生产潜能的发挥。Ｓｃｉｐｉｏｎｉ与Ｂｕｒｎｅｌｌ 等报道，在断奶仔猪日粮中添加１％柠檬酸，仔猪胃 和空肠内容物ｐＨ均低于对照组［１０１１］。Ｒｉｓｌｅｙ等在 断奶仔猪日粮中添加１．５％延胡索酸，也得到同样 的研究结果［１２］。然而 Ｍａｎｚａｎｉｌｌａ等的研究结果却 表明，在断奶仔猪日粮中添加酸化剂，不能降低仔猪 肠道ｐＨ［１３］。本试验使用的自配复合酸化剂也起不 到增加仔猪肠道酸度的效果。分析其原因可能是因 为：部分未经保护处理的酸化剂容易与饲料原料结 合，也可能在仔猪消化道中还未产生酸化作用就已 经被吸收，因此很难到达肠道发挥作用。为了使酸 化剂的酸化作用延伸到肠道，可以采用微胶囊制剂 或脂质保护外膜包被酸化剂。Ｂｏｓｉ等在断奶仔猪 日粮中加入０．５％经游离脂肪酸包被的酸化剂发 现，仔猪胃、回肠和盲肠ｐＨ 均比对照组更低，并提 高了仔猪日增体质量和日采食量［１４］。从本试验的 研究结果来看，在断奶仔猪日粮中添加微胶囊型复 合酸化剂，可以极显著降低仔猪胃和小肠ｐＨ，并显 著提高仔猪平均日增体质量和饲料利用率。这就提 示：微胶囊型复合酸化剂在仔猪胃肠道中具有缓释 效果，并且可以通过调节胃肠道ｐＨ，改善仔猪生产 性能。 ３．２　微胶囊型缓释复合酸化剂对断奶仔猪肠道功 能的影响 ３．２．１　微胶囊型缓释复合酸化剂对断奶仔猪肠组 织形态和消化酶活性的影响　　仔猪断奶后，由吮 吸母乳过渡到采食固体饲料的过程中，容易导致小 肠绒毛萎缩和隐窝加深，而小肠绒毛高度和隐窝深 度与小肠绒毛上皮细胞数量和成熟率呈显著相关， 因此断奶仔猪消化道的适应能力不如同日龄的哺乳 仔猪［１５１６］。Ｌｕｐｔｏｎ等认为，酸碱度会影响细胞生 长，且酸度增加可促进细胞分裂［１７］。本试验结果表 明，在断奶仔猪日粮中添加微胶囊型复合酸化剂，可 ２５７１ 　１２期 晏家友等：缓释复合酸化剂对断奶仔猪消化道酸度及肠道功能的影响 以显著增加仔猪小肠绒毛高度、降低隐窝深度，这可 能与仔猪肠道ｐＨ 降低有关。也有研究认为，仔猪 小肠绒毛高度降低和隐窝深度增加与纹状缘蔗糖酶 和乳糖酶活性下降相关［１８］。蔗糖酶和乳糖酶是仔 猪小肠中重要的碳水化合物分解酶，而小肠内容物 的酸度会影响消化酶的分泌和活性。本试验研究结 果表明，微胶囊型复合酸化剂可以增加仔猪消化道 内的酸度，还可以显著提高断奶仔猪小肠中蔗糖酶 和乳糖酶的活性。由此可以推测：微胶囊型复合酸 化剂可以通过降低断奶仔猪肠道ｐＨ，增强小肠消 化酶活性，改善肠组织形态。 ３．２．２　微胶囊型缓释复合酸化剂对断奶仔猪肠道 微生物菌群的影响　　关于酸化剂对断奶仔猪肠道 微生物的作用，存在不一致的报道。Ｇｅｄｅｋ、Ｋｉｒｃｈ ｇｅｓｓｎｅｒ和Ｆｒａｎｃｏ等研究结果都表明，饲料酸化后， 仔猪肠道中有害微生物数量减少［１９２１］。本试验结果 显示，微胶囊型复合酸化剂在仔猪断奶后期可以极 显著提高盲肠和结肠中乳酸杆菌数量，并降低大肠 杆菌数量，且试验组１的作用效果优于试验组２。 其原因可能是在仔猪日粮中添加微胶囊型复合酸化 剂后，试验组１仔猪的胃和小肠内ｐＨ控制在３．５～ ６．０之间，这就对大肠杆菌（适宜生长ｐＨ６．０～ ８．０）、梭状芽孢杆菌（适宜生长ｐＨ６．０～７．５）和葡 萄球菌（适宜生长ｐＨ６．８～７．５）等有害菌的生长起 到抑制作用，而乳酸杆菌等有益菌则可以在这种酸 性环境中生长，从而优化了仔猪消化道内的微生物 区系。此外，微胶囊型复合酸化剂主要是由多种有 机酸构成，而有机酸本身具有较强的杀菌能力，其在 肠道中释放后，可以调节仔猪肠道微生物区系平 衡［２２］。但Ｂｏｌｄｕａｎ等研究结果却表明，饲料酸化 后，仔猪消化道内的微生物没有受到影响［２３］。本试 验所用的自配复合酸化剂也没有起到改善仔猪肠道 微生物区系的作用。这可能与这些酸化剂的释放速 度、添加水平及适口性等有关［２４］。 ３．２．３　微胶囊型缓释复合酸化剂对断奶仔猪肠黏 膜免疫功能的影响　　肠黏膜免疫主要是局部组织 及免疫活性细胞在病原或抗原刺激下诱导的免疫应 答反应，以肠黏膜ＩｇＡ 浆细胞产生ＳＩｇＡ（分泌型 ＩｇＡ）为特征［２５］。ＳＩｇＡ作为肠黏膜免疫的主要效应 因子，具有中和病原体及其毒素、结合有害微生物并 抑制其在肠上皮细胞表面粘附的能力，因此ＳＩｇＡ 合成分泌异常，势必会削弱肠黏膜的免疫功能［２６］。 Ｂｏｓｉ等在断奶仔猪基础日粮中添加经脂肪包被的 甲酸钙发现，仔猪空肠黏膜抗体ＳＩｇＡ分泌量没有 显著变化［２７］。从本试验的研究结果来看，微胶囊型 复合酸化剂可以提高断奶仔猪小肠黏膜抗体ＳＩｇＡ 分泌量。这可能是由于微胶囊型复合酸化剂能够调 节仔猪肠道ｐＨ，改善肠道微生态环境，刺激浆细胞 分泌ＳＩｇＡ。本试验所用的自配复合酸化剂在仔猪 断奶后期反而有降低小肠黏膜抗体ＳＩｇＡ分泌量的 趋势。这些不一致的研究结果说明：仔猪肠黏膜免 疫系统复杂，并且调控肠黏膜抗体ＳＩｇＡ分泌的具 体作用机制还有待进一步研究。 ４　结　论 微胶囊型缓释复合酸化剂能够到达仔猪肠道发 挥酸化作用。它可以通过降低肠道ｐＨ，优化肠道 微生物区系，改善肠组织形态和功能，从而提高断奶 仔猪肠道的消化力和适应性，并促进仔猪生长。 参考文献： ［１］　ＭＡＮＮＥＲＳＭＪ．Ｔｈｅｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｏｆｄｉｇｅｓｔｉｖｅｆｕｎｃｔｉｏｎ ｉｎｔｈｅｐｉｇ［Ｊ］．犘狉狅犮犖狌狋狉犛狅犮，１９７６，３５（１）：４９５５． ［２］　ＣＲＡＮＷＥＬＬＰＤ，ＭＯＵＧＨＡＮＰＪ．Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｌｉｍｉｔａ ｔｉｏｎｓｉｍｐｏｓｅｄｂｙｔｈｅｄｉｇｅｓｔｉｖｅｓｙｓｔｅｍｔｏｔｈｅｇｒｏｗｔｈｐｅｒ ｆｏｒｍａｎｃｅｏｆｗｅａｎｅｄｐｉｇｓ［Ｃ］／／Ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｎｇｐｉｇｐｒｏｄｕｃ ｔｉｏｎＩＩ［Ｃ］．Ａｕｓｔｒａｌｉａ：Ｖｉｃｔｏｒｉａ，１９８９：１４０１６５． ［３］　ＭＡＲＩＢＯＨ，ＪＥＮＳＥＮＢＢ，ＨＥＤＥＭＡＮＮＭＳ．Ｄｉｆｆｅｒ ｅｎｔｄｏｓｅｓｏｆｏｒｇａｎｉｃａｃｉｄｓｔｏｐｉｇｌｅｔｓ［Ｍ］．犆狅狆犲狀犺犪犵犲狀： 犇犪狀犻狊犺犅犪犮狅狀犪狀犱犕犲犪狋犆狅狌狀犮犻犾，２０００：４６９． ［４］　ＣＡＮＩＢＥＮ，ＳＴＥＩＥＮＳＨ，ＯＶＥＲＬＡＮＤ Ｍ，ｅｔａｌ． ＥｆｆｅｃｔｏｆＫｄｉｆｏｒｍａｔｅｉｎｓｔａｒｔｅｒｄｉｅｔｓｏｎａｃｉｄｉｔｙ，ｍｉｃｒｏｂｉ ｏｔｉａ，ａｎｄｔｈｅａｍｏｕｎｔｏｆｏｒｇａｎｉｃａｃｉｄｓｉｎｔｈｅｄｉｇｅｓｔｉｖｅ ｔｒａｃｔｏｆｐｉｇｌｅｔｓ，ａｎｄｏｎｇａｓｔｒｉｃａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓ［Ｊ］．犑犃狀犻犿 犛犮犻，２００１，７９（８）：２１２３２１３３． ［５］　ＫＩＤＤＥＲＤＥ，ＭＡＮＮＥＲＳＭＪ．Ｄｉｇｅｓｔｉｏｎｉｎｔｈｅｐｉｇ ［Ｍ］．Ｅｎｇｌａｎｄ：ＫｉｎｇｓｔｏｎＰｒｅｓｓ，１９７８：１９０１９７． ［６］　ＳＵＴＴＯＮ ＡＬ，ＰＡＴＴＥＲＳＯＮ ＪＡ，ＫＥＬＬＹＤＴ． Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｄｉｅｔａｒｙｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅｓａｎｄｏｒｇａｎｉｃａｃｉｄａｄｄｉｔｉｏｎｓ ｏｎｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ犈．犮狅犾犻ａｎｄｏｔｈｅｒｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓｉｎｔｈｅ ｗｅａｎｉｎｇｐｉｇ［Ｃ］／／Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅ５ｔｈｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ｓｙｍｐｏｓｉｕｍｏｎａｎｉｍａｌｎｕｔｒｉｔｉｏｎ．Ｈｕｎｇａｒｙ：Ｋａｐｏｓｖａｒ， １９９６：３１６１． ［７］　ＭＵＫＩＩＢＩＭＵＫＡＧ，ＪＯＮＥＳＲＣ．Ｌｏｃａｌａｎｄｓｙｓｔｅｍｉｃ ＩｇＡａｎｄＩｇＧｒｅｓｐｏｎｓｅｓｏｆｃｈｉｃｋｓｔｏａｖｉａｎｒｅｏｖｉｒｕｓｅｓ： ｅｆｆｅｃｔｓｏｆａｇｅｏｆｃｈｉｃｋ，ｒｏｕｔｅｏｆｉｎｆｅｃｔｉｏｎａｎｄｖｉｒｕｓｓｔｒａｉｎ ［Ｊ］．犃狏犻犪狀犘犪狋犺狅犾，１９９９，２８（１）：５４６０． ［８］　ＥＦＩＲＤＲＣ，ＡＲＭＳＴＲＯＮＧ Ｗ Ｄ，ＨＥＲＭＡＮＤＬ． ３５７１ 畜　牧　兽　医　学　报 ４０卷　 Ｔｈｅｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｏｆｄｉｇｅｓｔｉｖｅｃａｐａｃｉｔｙｉｎｙｏｕｎｇｐｉｇｓ： ｅｆｆｅｃｔｓｏｆａｇｅａｎｄｗｅａｎｉｎｇｓｙｓｔｅｍ［Ｊ］．犑犃狀犻犿犛犮犻， １９８２，５５（６）：１３８０１３８７． ［９］　ＦＵＮＤＥＲＢＵＲＫＥＤＷ，ＳＥＥＲＬＥＹＲＷ．Ｔｈｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆ ｐｏｓｔｗｅａｎｉｎｇｓｔｒｅｓｓｏｒｓｏｎｐｉｇｗｅｉｇｈｔｃｈａｎｇｅ，ｂｌｏｏｄ，ｌｉｖｅｒ ａｎｄｄｉｇｅｓｔｉｖｅｔｒａｃｔｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ［Ｊ］．犑犃狀犻犿犛犮犻，１９９０， ６８（１）：１５５１６２． ［１０］　ＳＣＩＰＩＯＮＩＲ，ＺＡＧＨＩＮＩＧ，ＢＩＡＶＡＴＩＢ．Ａｃｉｄｉｆｉｅｄｄｉｅｔｓ ｉｎｅａｒｌｙｗｅａｎｉｎｇｐｉｇｌｅｔｓ［Ｊ］．犣狅狅狋犲犮犺犖狌狋狉犃狀犻犿，１９７８， ４：２０１２１８． ［１１］　ＢＵＲＮＥＬＬＴ Ｗ，ＣＲＯＭＷＥＬＬＧＬ，ＳＴＡＨＬＹ ＴＳ． Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｄｒｉｅｄｗｈｅｙａｎｄｃｏｐｐｅｒｓｕｌｆａｔｅｏｎｔｈｅｇｒｏｗｔｈ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｏｒｇａｎｉｃａｃｉｄｉｎｄｉｅｔｓｆｏｒｗｅａｎｌｉｎｇｐｉｇｓ［Ｊ］．犑 犃狀犻犿犛犮犻，１９８８，６６（５）：１１００１１０８． ［１２］　ＲＩＳＬＥＹＣＲ，ＫＯＲＮＥＧＡＹＥＴ，ＬＩＮＤＥＭＡＮＮＭＤ， ｅｔａｌ．Ｅｆｆｅｃｔｏｆｆｅｅｄｉｎｇｏｒｇａｎｉｃａｃｉｄｓｏｎｓｅｌｅｃｔｅｄｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｃｏｎｔｅｎｔｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔｓａｔｖａｒｙｉｎｇｔｉｍｅｓｐｏｓｔｗｅａｎｉｎｇｉｎ ｐｉｇｓ［Ｊ］．犑犃狀犻犿犛犮犻，１９９２，７０（１）：１９６２０６． ［１３］　ＭＡＮＺＡＮＩＬＬＡＥＧ，ＰＥＲＥＺＪＦ，ＭＡＲＴＩＮＭ，ｅｔａｌ． Ｅｆｆｅｃｔｏｆｐｌａｎｔｅｘｔｒａｃｔｓａｎｄｆｏｒｍｉｃａｃｉｄｏｎｔｈｅｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｅｑｕｉｌｉｂｒｉｕｍｏｆｅａｒｌｙｗｅａｎｅｄｐｉｇｓ［Ｊ］．犑犃狀犻犿犛犮犻，２００４， ８２（１１）：３２１０３２１８． ［１４］　ＢＯＳＩＰ，ＪＵＮＧＨＪ，ＨＡＮＩＫ，ｅｔａｌ．Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｄｉｅｔａｒｙ ｂｕｆｆｅｒｉｎｇｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃａｎｄｐｒｏｔｅｃｔｅｄｏｒｕｎｐｒｏｔｅｃｔｅｄａｃｉｄｓ ｏｎｐｉｇｌｅｔｇｒｏｗｔｈ，ｄｉｇｅｓｔｉｂｉｌｉｔｙａｎｄｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓｏｆｇｕｔ ｃｏｎｔｅｎｔ［Ｊ］．犃狊犻犪狀犃狌狊狋犑犃狀犻犿犛犮犻，１９９９，１２（７）： １１０４１１１０． ［１５］　ＣＥＲＡＫＲ，ＭＡＨＡＮＤＣ，ＣＲＯＳＳＲＦ，ｅｔａｌ．Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆａｇｅ，ｗｅａｎｉｎｇａｎｄｐｏｓｔｗｅａｎｉｎｇｄｉｅｔｏｎｓｍａｌｌｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｇｒｏｗｔｈａｎｄｊｅｊｕｎａｌｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙｉｎｙｏｕｎｇｓｗｉｎｅ［Ｊ］．犑 犃狀犻犿犛犮犻，１９８８，６６（２）：５７４５８４． ［１６］　ＫＥＬＬＹＤ，ＳＭＹＴＨＪＡ，ＭｃＣＲＡＣＫＥＮＫＪ．Ｄｉｇｅｓｔｉｖｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｏｆｔｈｅｅａｒｌｙｗｅａｎｅｄｐｉｇ［Ｊ］．犅狉犑 犖狌狋狉， １９９１，６５（２）：１６９１８０． ［１７］　ＬＵＰＴＯＮＪＲ，ＪＡＶＯＢＳＬＲ．Ｆｉｂｅｒｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔａｔｉｏｎｒｅ ｓｕｌｔｓｉｎｅｘｐａｎｄｅｄｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｖｅｚｏｎｅｓｉｎｒａｔｇａｓｔｒｉｃｍｕｃｏｓａ ［Ｊ］．犃犿犑犆犾犻狀犖狌狋狉，１９８７，４６（６）：９８０９８４． ［１８］　ＨＡＭＰＳＯＮＤＪ，ＫＩＤＤＥＲＤＥ．Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｏｆｃｒｅｅｐｆｅｅｄ ｉｎｇａｎｄｗｅａｎｉｎｇｏｎｂｒｕｓｈｂｏｒｄｅｒｅｎｚｙｍｅａｃｔｉｖｉｔｉｅｓｉｎｔｈｅ ｐｉｇｌｅｔｓｍａｌｌｉｎｔｅｓｔｉｎｅ［Ｊ］．犚犲狊犞犲狋狊犮犻，１９８６，４０（１）：２４ ３１． ［１９］　ＧＥＤＥＫＢ，ＫＩＲＣＨＧＥＳＳＮＥＲ Ｍ，ＥＩＤＥＬＳＢＵＲＧＥＲ Ｕ，ｅｔａｌ．Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｏｆｆｏｒｍｉｃａｃｉｄｏｎｔｈｅｍｉｃｒｏｆｌｏｒａｉｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｓｅｇｍｅｎｔｓｏｆｔｈｅｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｔｒａｃｔ，５：Ｉｎｖｅｓ ｔｉｇａｔｉｏｎｓａｂｏｕｔｔｈｅｎｕｔｒｉｔｉｖｅｅｆｆｉｃａｃｙｏｆｏｒｇａｎｉｃａｃｉｄｓｉｎ ｔｈｅｒｅａｒｉｎｇｏｆｐｉｇｌｅｔｓ［Ｊ］．犑犃狀犻犿犘犺狔狊犻狅犾犃狀犻犿犖狌狋狉， １９９２，６７（４）：２０６２１４． ［２０］　ＫＩＲＣＨＧＥＳＳＮＥＲＭ，ＧＥＤＥＫＢ，ＷＩＥＨＬＥＲＳ，ｅｔａｌ． Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｏｆｆｏｒｍｉｃａｃｉｄ，ｃａｌｃｉｕｍｆｏｒｍａｔｅａｎｄｓｏｄｉｕｍ ｈｙｄｒｏｇｅｎｃａｒｂｏｎａｔｅｏｎｔｈｅｍｉｃｒｏｆｌｏｒａｉｎｄｉｆｆｅｒｅｎｔｓｅｇ ｍｅｎｔｓｏｆｔｈｅｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｔｒａｃｔ，１０：Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｓａ ｂｏｕｔｔｈｅｎｕｔｒｉｔｉｖｅｅｆｆｉｃａｃｙｏｆｏｒｇａｎｉｃａｃｉｄｓｉｎｔｈｅｒｅａｒｉｎｇ ｏｆｐｉｇｌｅｔｓ［Ｊ］．犑犃狀犻犿犘犺狔狊犻狅犾犃狀犻犿 犖狌狋狉，１９９２，６８ （２）：７３８１． ［２１］　ＦＲＡＮＣＯＬＤ，ＦＯＮＤＥＶＩＬＡ Ｍ，ＭＯＴＡ Ｍ，ｅｔａｌ． Ｅｆｆｅｃｔｏｆｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓｏｆｏｒｇａｎｉｃａｃｉｄｓｏｎｇａｓｔｒｉｃｍｉｃｒｏ ｂｉｏｌｏｇｙｏｆｗｅａｎｅｄｐｉｇｌｅｔｓ［Ｊ］．犃狉犮犺犻狏狅狊犱犲犣狅狅狋犲犮狀犻犪， ２００５，５３（２０３）：３０１３０８． ［２２］　ＧＡＵＴＨＩＥＲＲ．Ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｈｅａｌｔｈ，ｔｈｅｋｅｙｔｏｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉ ｔｙ：Ｔｈｅｃａｓｅｏｆｏｒｇａｎｉｃａｃｉｄｓ［Ｃ］／／ＸＸＶＩＩＣｏｎｖｅｎｃｉｏｎ ＡＮＥＣＡＷＰＤＣ．ＪａｌＭｅｘｉｃｏ：ＰｕｅｒｔｏＶａｌｌａｒｔａ，２００２：８ １０． ［２３］　ＢＯＬＤＵＡＮＧ，ＪＵＮＧＨ，ＳＣＨＮＡＢＬＥＥ，ｅｔａｌ．Ｒｅｃｅｎｔ ａｄｖａｎｃｅｓｉｎｔｈｅｎｕｔｒｉｔｉｏｎｏｆｗｅａｎｅｒｐｉｇｌｅｔｓ［Ｊ］．犘犻犵犖犲狑狊 犐狀犳狅，１９８８，９：３８１３８５． ［２４］　ＷＥＡＫＬＡＮＤＳＪ，ＲＩＳＬＥＹＣＲ，ＫＯＲＮＥＧＡＹＥＴ． Ｔｈｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆｆｅｅｄｉｎｇｃｉｔｒｉｃａｎｄｆｕｍａｒｉｃａｃｉｄｏｎｇｒｏｗｔｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｐＨ，ａｎｄｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｏｆｃｈｌｏｒｉｄｅ ｉｏｎ，ａｎｄＶＦＡｉｎｗｅａｎｌｉｎｇｐｉｇｌｅｔｓ［Ｊ］．犖狌狋狉犃犫狊犪狀犱 犚犲狏，１９９０，５：３６３． ［２５］　ＷＯＯＦＪＭ，ＫＥＲＲＭＡ．Ｔｈｅｆｕｎｃｔｉｏｎｏｆｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂ ｕｌｉｎＡｉｎｉｍｍｕｎｉｔｙ［Ｊ］．犑犘犪狋犺狅犾，２００６，２０８（２）：２７０ ２８２． ［２６］　ＧＯＲＤＯＮＤＭ，ＤＩＥＢＥＬＬＮ，ＬＩＢＥＲＡＴＩＤＭ，ｅｔａｌ． Ｔｈｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆｂａｃｔｅｒｉａｌｏｖｅｒｇｒｏｗｔｈａｎｄｈｅｍｏｒｒｈａｇｉｃ ｓｈｏｃｋｏｎｍｕｃｏｓａｌｉｍｍｕｎｉｔｙ［Ｊ］．犃犿犛狌狉犵，１９９８，６４ （８）：７１８７２２． ［２７］　ＢＯＳＩＰ，ＳＡＲＬＩＧ，ＣＡＳＩＮＩＬ，ｅｔａｌ．Ｔｈｅｉｎｆｌｕｅｎｃｅｏｆ ｆａｔｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎｏｆｃａｌｃｉｕｍｆｏｒｍａｔｅｏｎｇｒｏｗｔｈａｎｄｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｄｅｆｅｎｃｅｉｎ犈狊犮犺犲狉犻犮犺犻犪犮狅犾犻Ｋ８８ｃｈａｌｌｅｎｇｅｄｗｅａｎｌｉｎｇｐｉｇｓ ［Ｊ］．犃狀犻犿犉犲犲犱犛犮犻犜犲犮犺，２００７，１３９（３４）：１７０１８５． ４５７１