TXB2酶联免疫分析试剂盒使用说明书

人 2,3Dinor血栓烷 B2（2,3-dinor-TXB2）酶联免疫试剂盒使用说明 本试剂盒仅供研究使用 特异性：本试剂盒可同时检测天然或重组的人 2,3-dinor-TXB2，且与其他相关蛋白无交叉反应。 有效期：6个月 预期应用：ELISA法定量测定人血清、血浆、细胞培养上清或其它相关生物液体中 2,3-dinor-TXB2含量。 说明 1．试剂盒保存：-20℃（较长时间不用时）；2-8℃（频繁使用时）。 2．浓洗涤液低温保存会有盐析出，稀释时可在水浴中加温助溶。 3．中、英文说明书可能会有不一致之处，请以英文说明书为准。 4．刚开启的酶联板孔中可能会含有少许水样物质，此为正常现象，不会对实验结果造成任何影响。 实验原理 用纯化的抗体包被微孔板，制成固相载体，往包被抗 2,3-dinor-TXB2抗体的微孔中依次加入标本或标准品、 生物素化的抗 2,3-dinor-TXB2抗体、HRP标记的亲和素，经过彻底洗涤后用底物 TMB显色。TMB在过氧 化物酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的 2,3-dinor-TXB2 呈正相关。用酶标仪在 450nm波长下测定吸光度（OD值），计算样品浓度。 试剂盒组成及试剂配制 1.酶联板（Assay plate ）：一块（96孔）。 2.标准品（Standard）：2瓶（冻干品）。 3.样品稀释液（Sample Diluent）：1×20ml/瓶。 4.生物素标记抗体稀释液（Biotin-antibody Diluent）：1×10ml/瓶。 5.辣根过氧化物酶标记亲和素稀释液 （HRP-avidin Diluent）：1×10ml/瓶。 6.生物素标记抗体（Biotin-antibody）：1×120μl/瓶（1：100） 7.辣根过氧化物酶标记亲和素（HRP-avidin）：1×120μl/瓶（1：100） 8.底物溶液（TMB Substrate）：1×10ml/瓶。 9.浓洗涤液（Wash Buffer）：1×20ml/瓶，使用时每瓶用蒸馏水稀释 25倍。 10.终止液（Stop Solution）：1×10ml/瓶（2N H2SO4）。 需要而未提供的试剂和器材 1.标准规格酶标仪 2.高速离心机 3.电热恒温培养箱 4.干净的试管和Eppendof管 5.系列可调节移液器及吸头，一次检测样品较多时，最好用多通道移液器 6.蒸馏水，容量瓶等 标本的采集及保存 1.血清：全血标本请于室温放置 2小时或 4℃过夜后于 1000 x g离心 20分钟，取上清即可检测，或将标本 放于-20℃或-80℃保存，但应避免反复冻融。 2.血浆：可用EDTA或肝素作为抗凝剂，标本采集后 30分钟内于 2 - 8° C 1000 x g离心 15分钟，或将标本 放于-20℃或-80℃保存，但应避免反复冻融。 3.细胞培养物上清或其它生物标本：1000 x g离心 20分钟，取上清即可检测，或将标本放于-20℃或-80℃ 保存，但应避免反复冻融。 注：标本溶血会影响最后检测结果，因此溶血标本不宜进行此项检测。 标本的稀释原则： 首先通过文献检索的方式了解待测样本的大致含量，确定适当的稀释倍数。只有稀释至标准曲线的范围内， 检测的结果才是准确的。稀释的过程中，应做好详细的。最后计算浓度时，稀释了“N”倍，标本的浓度 应再乘以“N”。 标准品的稀释原则：2瓶，每瓶临用前以样品稀释液稀释至 1ml，盖好后静置 10分钟以上，然后反复颠倒/ 搓动以助溶解，其浓度为 200 ng/ml，做系列倍比稀释后，分别稀释 200 ng/ml，100 ng/ml，50 ng/ml，25 ng/ml， 12.5 ng/ml，6.25 ng/ml，3.12 ng/ml，样品稀释液直接作为标准浓度 0 ng/ml，临用前 15分钟内配制。 如配制 100 ng/ml标准品：取 0.5ml（不要少于 0.5ml）200 ng/ml的上述标准品加入含 0.5ml样品稀释液的 Eppendorf管中，混匀即可，其余浓度以此类推。 生物素标记抗体的稀释原则： 临用前以生物素标记抗体稀释液稀释，稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制（每孔 100μl） ， 实际配制时应多配制 0.1-0.2ml。如10μl生物素标记抗体加 990μl生物素标记抗体稀释液的比例配制，轻轻 混匀，在使用前一小时内配制。 辣根过氧化物酶标记亲和素的稀释原则： 临用前以辣根过氧化物酶标记亲和素稀释液稀释，稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制（每 孔 100μl），实际配制时应多配制 0.1-0.2ml。如 10μl辣根过氧化物酶标记亲和素加 990μl辣根过氧化物酶 标记亲和素稀释液 的比例配制，轻轻混匀，在使用前一小时内配制。 操作步骤 实验开始前，请提前配置好所有试剂，试剂或样品稀释时，均需混匀，混匀时尽量避免起泡。每次检测都 应该做标准曲线。如样品浓度过高时，用样品稀释液进行稀释，以使样品符合试剂盒的检测范围。 1.加样：分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。空白孔加样品稀释液 100μl，余孔分别加标准品或待测样品 100μl，注意不要有气泡，加样将样品加于酶标板孔底部，尽量不触及孔壁，轻轻晃动混匀，酶标板加上盖 或覆膜，37℃反应 120分钟。 为保证实验结果有效性，每次实验请使用新的标准品溶液。 2.弃去液体，甩干，不用洗涤。每孔加生物素标记抗体工作液 100μl（取 1μl生物素标记抗体加 99μl生物 素标记抗体稀释液的比例配制，轻轻混匀，在使用前一小时内配制），37℃,60分钟。 3.温育 60分钟后，弃去孔内液体，甩干，洗板 3次，每次浸泡 1-2分钟，350μl/每孔，甩干。 4.每孔加辣根过氧化物酶标记亲和素工作液（同生物素标记抗体工作液） 100μl，37℃，60分钟。 5.温育 60分钟后，弃去孔内液体，甩干，洗板 5次，每次浸泡 1-2分钟，350μl/每孔，甩干。 6.依序每孔加底物溶液 90μl，37℃避光显色（30分钟内，此时肉眼可见标准品的前 3-4孔有明显的梯度蓝 色，后 3-4孔梯度不明显，即可终止）。 7.依序每孔加终止溶液 50μl，终止反应（此时蓝色立转黄色）。终止液的加入顺序应尽量与底物液的加入 顺序相同。为了保证实验结果的准确性，底物反应时间到后应尽快加入终止液。 8.用酶联仪在 450nm波长依序测量各孔的光密度（OD值）。 在加终止液后 15分钟以内进行检测。 注： 1. 用户在初次使用试剂盒时，应将各种试剂管离心数分钟，以便试剂集中到管底。 2. 每次实验留一孔作为空白调零孔，该孔不加任何试剂，只是最后加底物溶液及 2N H2SO4。测量时先用 此孔调OD值至零。 3. 为防止样品蒸发，试验时将反应板放于铺有湿布的密闭盒内，酶标板加上盖或覆膜。 4. 未使用完的酶标板或者试剂，请于 2-8℃保存。标准品、生物素标记抗体工作液、辣根过氧化物酶标记 亲和素工作液请依据所需的量配置使用。请勿重复使用已稀释过的标准品、生物素标记抗体工作液或、辣 根过氧化物酶标记亲和素工作液。 5. 建议检测样品时均设双孔测定，以保证检测结果的准确性。 洗板方法 手工洗板方法：吸去（不可触及板壁）或甩掉酶标板内的液体；在实验台上铺垫几层吸水纸，酶标板朝下 用力拍几次；将推荐的洗涤缓冲液至少 0.3ml注入孔内，浸泡 1-2分钟。根据需要，重复此过程数次。 自动洗板：如果有自动洗板机，应在熟练使用后再用到正式实验过程中。 计算 以标准物的浓度为横坐标（对数坐标），OD值为纵坐标（普通坐标），在半对数坐标纸上绘出标准曲线， 根据样品的OD值由标准曲线查出相应的浓度；再乘以稀释倍数；或用标准物的浓度与OD值计算出标准 曲线的直线回归方程式，将样品的OD值代入方程式，计算出样品浓度，再乘以稀释倍数，即为样品的实 际浓度。 注意事项 1. 当混合蛋白溶液时应尽量轻缓，避免起泡。 2. 洗涤过程非常重要，不充分的洗涤易造成假阳性。 3. 一次加样时间最好控制在 5分钟内，如标本数量多，推荐使用排枪加样。 4. 请每次测定的同时做标准曲线，最好做复孔。 5. 如标本中待测物质含量过高，请先稀释后再测定，计算时请最后乘以稀释倍数。 6. 在配制标准品、检测溶液工作液时，请以相应的稀释液配制，不能混淆。 7. 底物请避光保存。 8. 不要用其它生产厂家的试剂替换试剂盒中的试剂。