白附子混悬液对H_22_荷瘤小鼠抗肿瘤作用的免疫调节机制研究
天 津 中 医 药
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine
2011年 8月第 28卷第 4期
Aug. 2011,Vol.28 No.4
白附子混悬液对 H22 荷瘤小鼠
抗肿瘤作用的免疫调节机制研究 *
于晓红 1,宋 娜 1,胡艳文 2
(1.黑龙江中医药大学微生物学与免疫学教研室,哈尔滨 150040;2.天津市塘沽区妇幼保健院,天津 319000)
摘要:[目的]研究白附子混悬液对荷瘤小鼠免疫功能的调节作用,探讨其抗肿瘤作用的免疫学机制。[方法]采用
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天 津 中 医 药
Tianjin Journal of Traditional Chinese Medicine
2011年 8月第 28卷第 4期
Aug. 2011,Vol.28 No.4
白附子混悬液对 H22 荷瘤小鼠
抗肿瘤作用的免疫调节机制研究 *
于晓红 1,宋 娜 1,胡艳文 2
(1.黑龙江中医药大学微生物学与免疫学教研室,哈尔滨 150040;2.天津市塘沽区妇幼保健院,天津 319000)
摘要:[目的]研究白附子混悬液对荷瘤小鼠免疫功能的调节作用,探讨其抗肿瘤作用的免疫学机制。[方法]采用
H22荷瘤小鼠模型为研究对象,用酶联免疫吸附实验(ELISA)法检测小鼠血清中白介素-2(IL-2)和白介素-4(IL-4)水
平;用流式细胞术(FACS)法分析对 CD4+,CD8+T细胞的调节作用。[结果]白附子混悬液能够上调荷瘤小鼠血清 IL-2
细胞因子的表达,降低 IL-4水平,可以使 CD4+ T细胞表达升高,CD8+ T细胞表达降低。[结论]白附子混悬液能够通过
调节荷瘤机体异常免疫功能状态而发挥抗肿瘤作用。
关键词:白附子混悬液;H22细胞;免疫调节
中图分类号:R285.5 文献标识码:A 文章编号:1672-1519(2011)04-0326-03
*基金项目:黑龙江省科技攻关计划项目(GOOC201301)。
作者简介:于晓红(1958-),女,教授,硕士研究生导师,主要
从事中医药抗肿瘤的免疫学研究。
白附子,为天南星科多年生草本植物独角莲
(Typhonium giganteum Engl)的块茎。产于河南、甘
肃、湖北、黑龙江等地。味微辛,性温,有毒,归胃,肝
经。具有祛风痰、燥湿、定惊、散结止痛之功效,外用
治瘰疬痰核[1]。白附子的化学成分及药理作用近年
来已有报道,主要含有脂肪酸、甾体类化合物、挥发
油成分、氨基酸和微量元素等。白附子的药理学作
用主要有抗炎、镇静、抗惊厥、止痛,并对多种恶性
肿瘤具有一定的抑瘤效果[2-5]。白附子治疗各种肿瘤
在民间广为应用,但目前尚无对其抗肿瘤作用的免
疫调节机制的研究报道[6]。前期研究表明白附子混
悬液(SGTR)通过体内免疫调节抗肿瘤,抑瘤率可达
39.14%。在前期研究的基础上,本课题组进一步对
白附子混悬液抗肿瘤的免疫调节机制进行深入研
究分析,为研制一新型抗肿瘤辅助药物提供现代免
疫学资料。
1 实验材料和方法
1.1 动物 选用健康昆明种小鼠(KM),(20±2.0)g
(6~8周龄),雌雄各半,购于黑龙江中医药大学动物
实验中心。许可证号:黑医实验动物单项准第 61号。
1.2 H22瘤株 由哈尔滨医科大学肿瘤研究所提供。
1.3 药物及试剂
1.3.1 药物 1)白附子鲜品购于黑龙江省五常市,
经黑龙江中医药大学生药实验室专家鉴定为天南
星科植物独角莲的块茎。去须、洗净、切成约 2 mm
的厚片,经 60 ℃烘干粉碎,过 80目筛,临用时以双
蒸馏水溶解成不同浓度(按倍比稀释法)。2)环磷酰
胺注射液(CTX),由江苏恒瑞医药股份有限公司生
产,产品批号:06111521。
1.3.2 试剂 抗 CD4-藻红蛋白(PE)和抗 CD8-异
硫氰酸荧光素(FITC)单抗,小鼠白介素-2(IL-2)试
剂盒和小鼠白介素-4(IL-4)试剂盒(为深圳晶美生物
工程有限公司产品)。
1.4 仪器 酶联免疫检测仪(anthos 2010 17750,
Austria);微量加样器(SOCOREX,瑞士);FAC-
SCALIBUR 流式细胞仪(BD 公司,美国);电热恒温
培养箱(上海福玛实验设备有限公司);低温超速离
心机(KDC-160HR,安徽,合肥)等。
1.5 动物模型的制备 无菌取第 8 天转移癌 H22
腹水(计活细胞大于 95%),用 0.9%生理盐水稀释成
2×106个/mL,取健康纯系昆明种小鼠 40只,18~22 g
(6周龄),雌雄各半,每只鼠右侧腋部皮下接种 0.2 mL
瘤细胞悬液,然后将荷瘤鼠按照随机数字表法随机
分为 4组,每组 10只(雌雄各半),分别为模型组、
实验组、环磷酰胺组和联合用药组,另取 10只未接
种荷瘤的小鼠(雌雄各半)作为正常对照组。
1.6 动物分组及给药方法 正常对照组:生理盐水灌胃
0.02 mL/(g·d),腹腔注射生理盐水 0.2 mL;模型组:
生理盐水灌胃 0.02 mL/(g·d),腹腔注射生理盐水
0.2 mL;实验组:白附子混悬液[825 mg/(kg·d)]灌胃
0.02 mL/(g·d),腹腔注射生理盐水 0.2 mL;环磷酰
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表 2 白附子混悬液对 H22荷瘤小鼠外周血 CD4+、CD8+
细胞的影响(x±s)
Tab.2 Effects of SGTR on blood CD4+,CD8+ cells in H22
tumor bearing mice(x±s)
CD4+细胞 CD8+细胞 CD4+/CD8+
46.09±2.07 22.62±1.68 2.05±0.22
40.00±1.65** 28.86±1.58** 1.39±0.09
45.19±0.90▲▲ 24.00±1.24▲▲ 1.92±0.11
37.17±1.52**▲▲ 17.92±1.22**▲▲ 2.08±0.15
40.62±1.89** 22.64±2.31▲▲ 1.81±0.23
组别 n
正常对照组 10
模型组 10
实验组 10
环磷酰胺组 10
联合用药组 10
注:与正常组相比,**P<0.01;与模型组相比,▲▲P<0.01。
注:与正常组相比,**P<0.01;与模型组相比,▲▲P<0.01。
表 1 白附子混悬液对 H22荷瘤小鼠血清
IL-2,IL-4的影响(x±s)
Tab.1 Effects of SGTR on serum IL-2,IL-4 in H22
tumor bearing mice(x±s)
IL-2(ng/L) IL-4(ng/L)
164.47±10.95 101.36± 6.21
114.68±11.09** 133.21±10.22**
158.10± 8.66▲▲ 99.80± 7.56▲▲
112.48±11.25** 93.97± 4.77▲▲
130.95±15.11**▲▲ 94.88± 6.69▲▲
组别 n
正常对照组 10
模型组 10
实验组 10
环磷酰胺组 10
联合用药组 10
胺组:生理盐水灌胃 0.02 mL/(g·d),腹腔注射 CTX
[30 mg/(g·d)] 0.2 mL;联合用药组:白附子混悬液
[825 mg/(kg·d)]灌胃 0.02 mL/(g·d),腹腔注射 CTX
[30 mg/(kg·d)] 0.2 mL。
以上各组均从实验第 2天开始给药,每日 1次,
连续 10 d。称质量后,眼球取血,颈椎脱臼处死,以
75%乙醇浸泡消毒后剥离瘤组织。
1.7 测定方法
1.7.1 小鼠外周血 IL-2水平的测定 原理:酶标双
抗体夹心法。1)小鼠眼球取血,置于离心管中,分离
血清(3 000 r/min,离心 5 min)。2)从密封袋中取出
所需板条,平衡至室温。3)除空白孔外,分别将标本
或不同浓度
品(每孔 100 μL)加入相应孔中,用
封板胶纸封住反应孔,37 ℃孵箱孵育 90 min,洗板
4次。4)除空白孔外,加入生物素化抗体工作液(每
孔 100 μL)。封住板孔,37 ℃孵箱孵育 60 min,洗板
4 次。5)除空白孔外,加入酶结合物工作液(每孔
100 μL)。封住板孔,37 ℃孵箱孵育 30 min,洗板
4次。6)加入显色剂(每孔 100 μL),避光 37 ℃孵箱
显色 15 min,加入终止液(每孔 100 μL),混匀后即
刻测量 OD492值(5 min内)。
1.7.2 小鼠外周血 IL-4水平的测定 实验原理、方
法基本同于 IL-2测定。
1.7.3 流式细胞术(FACS)法测定 T淋巴细胞 CD4+
和 CD8+细胞亚群 取抗凝血 100 μL放于试管中,
分别加入抗 CD4-藻红蛋白(PE)和抗 CD8-异硫氰酸
荧光素(FITC)单抗各 10 μL,置室温避光 20 min,加
入红细胞裂解液 2 mL,离心弃上清液,加磷酸盐缓
冲液(PBS)洗液 2 mL混匀,离心后弃上清液,加入固
定液 600 μL,4 ℃存放至少 30 min后,流式细胞仪
测定。
1.8 统计学方法 计量资料用均数±标准差(x±s)
表示,组间比较采用单因素方差分析,P<0.05为差
异有统计学意义。
2 实验结果
2.1 白附子混悬液对 H22荷瘤小鼠血清 IL-2,IL-4
的影响 见表 1。模型组与正常对照组比较差异有
统计学意义(P<0.01)。实验组与模型组比较差异有
统计学意义(P<0.01),结果接近正常对照组水平
(P>0.05)。环磷酰胺组的 IL-2水平与模型组比较无
统计学意义(P>0.05),与正常组比较差异有统计学
意义(P<0.01);而 IL-4 水平低于模型组(P<0.01),
表明 CTX(环磷酰胺注射液)对荷瘤小鼠 IL-2的表
达无明显调节作用,且有较强的抑制作用。联合用
药组 IL-2 水平与模型组比较差异有统计学意义
(P<0.01),与正常对照组比较差异有统计学意义
(P<0.01),说明两药合用后能够调节机体的免疫状
态,降低 CTX(环磷酰胺注射液)的免疫抑制作用,
但尚不能使 IL-2 水平得以完全纠正。
2.2 白附子混县液对 H22荷瘤小鼠外周血 CD4+、
CD8+细胞的影响 见表 2。模型组与正常对照组比
较差异有统计学意义(P<0.01)。实验组与模型组比
较差异,有统计学意义(P<0.01),结果接近正常对照
组水平(P>0.05),能够使 CD4+细胞回升,CD8+细胞有
所回落,明显改善 CD4+/CD8+的失衡状态。环磷酰胺
组与正常对照组和模型组比较差异均有统计学意
义(P<0.01),CD4+细胞、CD8+细胞均明显降低。联合用
药组的 CD8+细胞水平接近正常对照组(P>0.05),CD4+
细胞水平与正常对照组比较差异有统计学意义(P<
0.01),说明两药合用能够部分改善环磷酰胺的抑制
作用,调节机体 CD4+/CD8+失衡状态。
3 讨论
荷瘤小鼠外周血 T细胞亚群比例出现异常,表
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现为 CD4+T细胞减少,CD8+T细胞增多,这些变化可
以通过 CD4+/CD8+比值得到更敏感的反映。即荷瘤机
体 CD4+/CD8+比值下降,小鼠机体免疫功能减弱。CD4+T
细胞可分化为 TH1细胞和 TH2细胞,其诱导因素
有:由感染引发的细胞因子[主要是干扰素(IFN)-γ、
IL-12和 IL-4]、启动免疫应答的协同刺激信号以及
肽-主要组织相容性复合物(MHC)的性质。IL-4可促
进 CD4+T细胞分化成 TH2。模型组荷瘤小鼠 IL-2
水平明显下降,IL-4水平明显升高,说明荷瘤小鼠
免疫功能处于紊乱状态,TH2细胞相对处于优势地
位,抑制了抗肿瘤特异性免疫应答 TH1细胞的优势
状态。
用白附子混悬液治疗后,能使荷瘤小鼠 CD4+ T
细胞表达增加,CD8+ T细胞表达降低,可以明显改善
CD4+/CD8+比值的失衡状态,恢复机体正常的免疫状
态,从而发挥抗肿瘤的作用。同时白附子混悬液能
够促进荷瘤小鼠 IL-2的表达,使 IL-4水平有所下降,
使荷瘤小鼠的 IL-2、IL-4水平接近正常对照组,说
明白附子混悬液能够促进荷瘤小鼠 TH1型细胞因
子的表达,使荷瘤小鼠由 TH2型细胞因子优势状态
向 TH1型逆转,纠正 TH1/TH2漂移,从而增强荷瘤
机体的细胞免疫功能,提高荷瘤机体的抗肿瘤能力。
白附子混悬液与 CTX合用后,CD4+细胞、CD8+细
胞均有所回升 CD8+细胞水平接近正常对照组,说明
两药合用能够部分改善 CTX对荷瘤小鼠的细胞免
疫抑制作用,调节机体 CD4+/CD8+的失衡状态。同时
能使 IL-2表达水平提高,说明两药合用后能够调节
荷瘤机体的免疫状态,降低 CTX对荷瘤小鼠细胞免
疫的抑制作用,但尚不能使 IL-2水平得以完全纠正。
综上,白附子混悬液可以改善荷瘤机体 CD4+/
CD8+的失衡状态,促进 IL-2等 TH1型细胞因子的
表达,纠正荷瘤机体 TH1/TH2漂移,提高荷瘤机体
的细胞免疫功能而发挥抗肿瘤效应。
参考文献:
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出版社,2005:3-8.
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PCNA基因表达的影响[J].天津中医药,2007,24(5):399-401.
(收稿日期:2011-04-26)
The immune adjustment mechanism of anti-tumor efficacy of SGTR on H22 tumor bearing mice
YU Xiao-hong1, SONG Na1, HU Yan-wen2
(1. Department of Microbiology and Immunology, Heilongjiang University of TCM, Harbin 150040, China;
2. Maternal and Child Health Hospital of Tianjin Tanggu District, Tianjin 319000, China)
Abstract: [Objective] Study the adjustment function of SGTR on the immune system of tumor-bearing mice and investigate the immuno-
logical mechanism of the inhibition function of SGTR on tumor’s growth. [Methods] H22 tumor bearing mice were as the research object.
We measured the levels of IL-2 and IL-4 in serum with ELISA method, and the influence of SGTR on CD4+、CD8+ T cell with FACS
method. [Results] SGTR can improve the expression of IL-2 cytokines in H22 tumor bearing mice's serum, lower the level of IL-4, increase
the expression of CD4+ T cells, and reduce the expression of CD8+ T cells in H22 tumor bearing mice. [Conclusion] SGTR could play a role
of anti-tumor activity by regulating the body’s abnormal immune function in tumor-bearing state.
Key words:SGTR; H22 cells; immune regulation
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