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SNT 2774-2011 国境口岸鼠疫耶尔森菌蛋白悬浮芯片检测方法

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SNT 2774-2011 国境口岸鼠疫耶尔森菌蛋白悬浮芯片检测方法 书书书 中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 犛犖/犜2774—2011 国境口岸鼠疫耶尔森菌蛋白悬浮芯片 检测方法 犇犲狋犲犮狋犻狅狀犿犲狋犺狅犱犳狅狉犢犲狉狊犻狀犻犪狆犲狊狋犻狊犫狔狆狉狅狋犲犻狀狊狌狊狆犲狀狊犻狅狀犪狉狉犪狔犪狋犳狉狅狀狋犻犲狉狆狅狉狋 20110225发布 20110701实施 中 华 人 民 共 和 国 国家质量监督检验检疫总局 发 布 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 书书书 前  言   本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。 请注意本文件的某些内容可能...
SNT 2774-2011 国境口岸鼠疫耶尔森菌蛋白悬浮芯片检测方法
书书书 中华人民共和国出入境检验检疫行业 犛犖/犜2774—2011 国境口岸鼠疫耶尔森菌蛋白悬浮芯片 检测 犇犲狋犲犮狋犻狅狀犿犲狋犺狅犱犳狅狉犢犲狉狊犻狀犻犪狆犲狊狋犻狊犫狔狆狉狅狋犲犻狀狊狌狊狆犲狀狊犻狅狀犪狉狉犪狔犪狋犳狉狅狀狋犻犲狉狆狅狉狋 20110225发布 20110701实施 中 华 人 民 共 和 国 国家质量监督检验检疫总局 发 布 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 书书书 前  言   本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专利的。 本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。 本标准起草单位:中国检验检疫科学研究院。 本标准主要起草人:王静、孙肖红、杨宇、杨永莉、胡孔新、文海燕。 Ⅰ 犛犖/犜2774—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 国境口岸鼠疫耶尔森菌蛋白悬浮芯片 检测方法 1 范围 本标准规定了国境口岸可疑物品或环境样品中鼠疫耶尔森菌的蛋白悬浮芯片检测方法,包括样品 处理、检测方法、结果判定及报告。 本标准适用于国境口岸可疑物品或环境样品中鼠疫耶尔森菌的实验室检验。 2 性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB19489 实验室 生物安全通用要求 人间传染的病原微生物名录(卫生部,2006年) 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 鼠疫耶尔森菌 犢犲狉狊犻狀犻犪狆犲狊狋犻狊 鼠疫菌为耶尔森菌属由假结核菌进化而来的新生病原体,革兰氏染色阴性、不运动、不形成芽孢的 球杆菌,能够引发腺鼠疫、败血型鼠疫和肺鼠疫,是生物战剂和生物恐怖的重要病原菌之一。 3.2 鼠疫耶尔森菌犉1抗原 犢犲狉狊犻狀犻犪狆犲狊狋犻狊犉1犪狀狋犻犵犲狀 F1抗原是鼠疫菌的荚膜抗原,是鼠疫菌于37℃条件下在细胞壁外形成的一层厚凝胶状荚膜,是鼠 疫菌主要的保护性抗原。人或动物感染鼠疫菌后,F1抗原在体内高度表达,具有明显抗吞噬和活化补 体的作用。鼠疫菌F1抗原具有抗原性强、特异性高等特点,检测F1抗原及其抗体是鼠疫诊断的重要 依据,也是目前公认的鼠疫菌种特异性抗原之一。 3.3 蛋白悬浮芯片 狆狉狅狋犲犻狀狊狌狊狆犲狀狊犻狅狀犪狉狉犪狔 利用带编码的包覆荧光发色剂的微球为载体标定目标抗原或抗体,以报告分子(如:荧光染料)标记 目标抗原或抗体,流式细胞仪作为检测平台,可以对抗原或抗体等生物分子进行大规模检测的一种生物 芯片技术。 4 仪器设备 悬浮芯片系统1)、微孔滤板抽滤器、真空气泵、恒温振荡器、生物安全柜、离心机、荧光显微镜、超声 波清洗器、恒温培养箱、纯水机、漩涡混合仪、血球计数板。 1) Luminex100/200或等效设备。 1 犛犖/犜2774—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 5 主要试剂与耗材 5.1 试剂 生物素标记试剂盒:BiotinLabelingKitSH(Pierce)2)或等效试剂盒,微球交联试剂盒:AmineCou plingKit(BioRad)3)或等效试剂盒,悬浮芯片仪校准试剂盒:BioPlexCalibrationKit(BioRad)4)或等 效试剂盒,悬浮芯片仪校验试剂盒:BioPlexValidationKit(BioRad)5)或等效试剂盒6),兔抗鼠疫菌F1 抗原抗体(或等效抗体),鼠疫F1抗原单抗2F6(或等效抗体),藻红蛋白标记链霉亲和素(SAPE),1(3 二甲氨基丙基)3乙基碳二亚胺盐酸盐(EDC),牛血清白蛋白(BSA),犖羟基硫代琥珀酰亚胺(Sulfo NHS),鸡IgG,兔抗鸡IgG,羊抗兔IgG,吐温20。 其他所需缓冲溶液配制及要求参见附录A。 2)、3)、4)、5)、6) 由指定单位提供,给出这一信息是为了方便本文件的使用者,并不表示对该产品的认可。如果其 他等效产品具有相同的效果,则可使用这些等效产品。 5.2 耗材 羧基化编码微球、96孔滤板、消毒液:10%的次氯酸钠溶液(含有效氯>10%)、悬浮芯片仪样品流 路鞘液。 6 抗体包被编码微球和生物素标记抗体 6.1 活化编码微球 6.1.1 取100μL编码微球到1.5mL离心管中,14000犵离心4min,小心吸出上清液并弃去。 6.1.2 加入100μL的微球清洗缓冲液悬浮,振荡30s,超声30s,14000犵离心4min,小心吸出上清液 并弃去。 6.1.3 加入100μL的微球活化缓冲液,然后先加入10μL新鲜配制的EDC工作液,再加入10μL新鲜 配制的SulfoNHS工作液,高速振荡30s后用铝箔包裹,在室温18℃~25℃振摇20min。 6.1.4 加入150μL的PBS(pH7.4),振荡10s后,14000犵离心4min,小心吸出上清液并弃去。 6.1.5 重复6.1.4步骤一次。 6.1.6 加入100μL的PBS(pH7.4)悬浮编码微球,中速振荡30s后,超声15s。 6.2 抗体包被编码微球 6.2.1 取溶于0.03mol/LPB缓冲液(pH7.2)兔抗F1抗体12μg加入到活化后的编码微球中,用 PBS(pH7.4)定容至500μL,铝箔包裹在室温18℃~25℃振摇2h。然后,14000犵离心4min,小心吸 出上清液并弃去。 6.2.2 加入500μL的PBS(pH7.4),振荡混匀,14000犵离心4min,小心吸出上清液并弃去。 6.2.3 加入250μL微球封闭缓冲液悬浮编码微球,中速振荡15s,用铝箔包裹,在室温18℃~25℃振 摇30min,14000犵离心4min,小心吸出上清液并弃去。 6.2.4 加入500μL微球保存液洗涤编码微球,16000犵离心6min,小心吸出上清液并弃去。 6.2.5 用150μL的微球保存液悬浮编码微球,于0℃~4℃避光保存备用,有效期1年。 6.3 包被微球的计数 吸取适量微球,稀释后,用血球计数板(0.10mm;1/400mm2)在显微镜下计数,计算见式(1): 2 犛犖/犜2774—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 微球数量=4个大格平均数×104×稀释倍数×体积(mL) ………………(1)   微球数量。包被微球是否成功见B.1。 6.4 生物素标记抗体 6.4.1 将生物素从冰箱取出,平衡至室温18℃~25℃。 6.4.2 分别配制浓度为10mmol/L生物素溶液(超纯水配制)和2mg/mL单抗2F6溶液(PBS配制)。 6.4.3 按照每1mL单抗2F6溶液加入27μL生物素进行标记,室温18℃~25℃振摇30min(或冰上 2h),经 HiTrapdesalting脱盐柱,-20℃冻存备用有效期1年。 6.4.4 生物素标记抗体是否成功参见B.2。 7 样品的悬浮芯片检测 7.1 样品处理 将可疑样品按照0.1g/mL加入样品稀释液中,在漩涡振荡器上振荡溶解后,将样品悬液1000犵低 速离心4min(或滤纸过滤),所得上清液(或滤液)可直接进行悬浮芯片分析检测。 7.2 检测方法 7.2.1 总则:采用双抗体夹心免疫学检测模式,检测过程中全部反应均在96孔滤板上进行。 7.2.2 用微球稀释液将包被好的微球(6.3)稀释至每微升70个~100个微球。 7.2.3 以100μL检测缓冲液润湿滤板,将滤板置于微孔滤板吸滤器,打开真空气泵气抽去所有液体进 行抽滤,再将滤板放在干净的纸巾上,完全吸去所有液体。 7.2.4 每孔加入7.2.2的微球稀释液50μL(含微球3500个~5000个),真空泵抽滤后,加入100μL 微球清洗缓冲液洗涤并用真空泵抽滤,洗涤进行2次。 7.2.5 每孔加入50μL检测样品,并设空白对照3孔,混匀后25℃避光振摇30min,真空泵抽滤后,加 入100μL微球清洗缓冲液洗涤并抽滤,洗涤进行3次。 7.2.6 每孔加入50μL生物素化单抗2F6溶液,混匀后25℃避光振摇30min,真空泵抽滤后,加入 100μL微球清洗缓冲液洗涤并真空泵抽滤,洗涤进行3次。 7.2.7 每孔加入50μL检测缓冲液稀释的SAPE(含SAPE4ng),混匀后25℃避光振摇10min,真空 泵抽滤后,加入100μL微球清洗缓冲液洗涤并真空泵抽滤,洗涤进行3次。 7.2.8 每孔加入125μL检测缓冲液,经振荡使微球重悬。 7.2.9 用悬浮芯片系统读取 MFI数值并分析数据。 注:每次用真空泵抽滤完后,用不同干净纸巾完全吸去液体,以避免交叉污染。 8 结果判断 8.1 犆狌狋狅犳犳值 3个空白对照的检测均值与3倍标准差之和。其中,标准差由3个空白对照检测值计算得出。 8.2 质量控制 反应结果应同时符合以下4个条件,否则实验结果无效: a) BSA包被微球作为阴性质控,检测荧光值低于Cutoff值; b) SAPE包被微球作为荧光质控,检测荧光值远大于Cutoff值(大于100倍); 3 犛犖/犜2774—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 c) 生物素化的BSA包被微球作为偶联质控,检测荧光值远大于Cutoff值; d) 鸡IgG包被微球和生物素化兔抗鸡IgG的组合作为抗体质控(反应过程质控),检测荧光值远 大于Cutoff值。 8.3 结果分析及报告 8.3.1 阳性 检测样品荧光值远大于Cutoff值(2倍以上),报告为鼠疫耶尔森菌蛋白悬浮芯片检测阳性。若检 测结果处于灰度区间(Cutoff值的1倍~2倍),应重做,若重做结果远大于Cutoff值,则报告为鼠疫 耶尔森菌蛋白悬浮芯片检测阳性;若检测结果仍处于灰度区间则报告为鼠疫耶尔森菌蛋白悬浮芯片检 测弱阳性,应使用其他方法进行验证。 8.3.2 阴性 检测样品荧光值小于Cutoff值,报告为鼠疫耶尔森菌蛋白悬浮芯片检测阴性。 9 生物安全防护 9.1 根据《人间传染的病原微生物名录》的要求,本实验应在生物安全2级实验室中进行。 9.2 做好个人防护。实验操作时穿戴防护设备,如手套、实验服、口罩。 9.3 使用过的实验用品应遵照GB19489的要求,对废弃物应进行无害化处理。 4 犛犖/犜2774—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 附 录 犃 (资料性附录) 试剂的配制 犃.1 0.03犿狅犾/犔犘犅缓冲液(狆犎7.2) 用800mL纯水溶解2.83g磷酸氢二钠,1.36g磷酸二氢钾,用盐酸调节溶液的pH值至7.2,加纯 水至1L。 犃.2 样品稀释液 0.01mol/LPB,pH7.2,用0.03mol/LPB缓冲液稀释而成。 犃.3 犘犅犛(狆犎7.4)缓冲液 氯化钠137mmol/L;氯化钾2.7mmol/L;磷酸氢二钠10mmol/L;磷酸二氢钾2mmol/L。用 800mL纯水溶解8g氯化钠,0.2g氯化钾,1.44g磷酸氢二钠和0.24g磷酸二氢钾。用盐酸调节溶液 的pH值至7.4,加纯水至1L。分装后在121℃高压蒸汽20min,或过滤除菌,保存于室温。 犃.4 微球清洗缓冲液 PBS(pH7.4),0.05%吐温20。 犃.5 微球活化缓冲液100犿犿狅犾/犔磷酸二氢钠 3g磷酸二氢钠,5mol/L氢氧化钠1.5mL,定容于250mL,pH6.2。 犃.6 微球保存液 PBS,0.1%BSA,0.02%吐温20,0.05% Azide,pH7.4。 犃.7 微球封闭液 PBS,1%BSA,0.05% Azide,pH7.4。 犃.8 检测缓冲液 PBS,1%BSA,pH7.4。 犃.9 微球稀释液 PBS,1%BSA,pH7.4。 5 犛犖/犜2774—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 犃.10 犈犇犆工作液 50mg/mL,纯水配制(现配现用)。 犃.11 犛狌犾犳狅犖犎犛工作液 50mg/mL,纯水配制(现用现配)。 犃.12 水 本标准所使用水均为纯水机过滤后的去离子水。 6 犛犖/犜2774—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 附 录 犅 (规范性附录) 实验过程的质控 犅.1 包被微球的质控 犅.1.1 用旋涡混合仪充分振荡包被好的微球,使微球均匀分散开来(避光储存在4℃)。 犅.1.2 用微球稀释液将包被好的微球稀释至每微升70个~100个微球。 犅.1.3 按1∶250稀释生物素标记抗原或抗体(与微球上包被的特异性结合)。 犅.1.4 以100μL检测缓冲液润湿滤板,将滤板置于微孔滤板吸滤器,打开真空气泵气抽去所有液体进 行抽滤,再将板放在干净的纸巾上,完全吸去所有液体。 犅.1.5 每孔加入B.1.2的微球稀释液50μL(含3500个~5000个微球),加入裸珠(没有包被的微球) 50μL(含3500个~5000个微球)作为空白对照,用真空泵抽滤后,加入100μL微球清洗缓冲液洗涤并 用真空泵抽滤,洗涤进行2次。 犅.1.6 每孔加入50μLB.1.3,混匀后25℃避光振摇30min,用真空泵抽滤后,加入100μL微球清洗 缓冲液洗涤并真空泵抽滤,洗涤进行3次。 犅.1.7 每孔加入50μL用检测缓冲液稀释的SAPE(含SAPE4ng),混匀后25℃避光振摇10min,真 空泵抽滤后,加入100μL微球清洗缓冲液洗涤并真空泵抽滤,洗涤进行3次。 犅.1.8 每孔加入125μL检测缓冲液,经振荡使微球重悬。 犅.1.9 用悬浮芯片系统读取荧光强度 MFI数值并分析数据。 犅.1.10 结果判定:空白对照MFI低于100,包被微球MFI大于2000的可使用;若包被微球MFI小于 2000,则说明包被不成功,应重新包被。 注:每次用真空泵抽滤完后,用不同干净纸巾完全吸去液体,以避免交叉污染。 犅.2 生物素化抗体的质控 犅.2.1 用抗原包被ELISA96孔板每孔加入50μL,4℃静止过夜。 犅.2.2 加入封闭液(含5%BSA的PBS溶液)200μL/孔在37℃封闭1h。 犅.2.3 洗液(含0.5%吐温20的PBS溶液)300μL/孔洗3次,拍干。 犅.2.4 加入生物素化的抗体,50μL/孔,室温放置30min。 犅.2.5 洗液300μL/孔洗3次,拍干。 犅.2.6 加入适量辣根酶标记链霉亲和素(SA/HRP),50μL/孔,室温放置30min。 犅.2.7 洗液300μL/孔洗3次,拍干。 犅.2.8 加入TMB显色液(可溶型单组分TMB底物溶液)显色,50μL/孔,室温放置10min。 犅.2.9 最后用2mol/L硫酸50μL/孔终止反应。 犅.2.10 结果判定: 犅.2.10.1 用目测法,若阴性对照孔出现很淡蓝色,阳性孔颜色很深,则生物素化抗体可使用;否则,需 重新进行新一轮抗体的生物素化标记。 犅.2.10.2 应用酶标仪测读A450数值,临界值=2.1×空白对照A值(当空白对照平均A值小于0.05 时,按0.05计算;当空白对照平均A值大于或等于0.05时按实际值计算),若检测孔颜色很深,且A值 大于临界值则生物素化抗体可使用;否则,需重新进行抗体的生物素化标记。 犛犖/犜2774—2011 版权所有 · 禁止翻制、电子发售 书书书 1102— 4772 犜/ 犖犛 中华人民共和国出入境检验检疫 行 业 标 准 国境口岸鼠疫耶尔森菌蛋白悬浮芯片 检测方法 SN/T2774—2011  中 国 标 准 出 版 社 出 版 北京复兴门外三里河北街16号 邮政编码:100045 网址 www.spc.net.cn 电话:68523946 68517548 中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷  开本 880×1230 1/16 印张 0.75 字数 14 千字 2011年6月第一版 2011年6月第一次印刷 印数1—1600  书号:155066·222056 定价 16.00 元 版权所有 · 禁止翻制、电子发售
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