中国兽医寄生虫病2007,15(6):1.7chine弗JoqrⅡd0fVd盱i“唧Pam缸“o盯
·研究论文·
动物源·眭食品中弓形虫NestedPCR
—RFLP分子检测技术的建立
王权1,王巧垒2,潘淑娟3,陈志强4, 陈永军1, 常小斌4, 李健2
11.中国农业科学院上海兽医研究所,上海2∞232;2.上海出入境检验检疫局。
上海2帅135;3.上海市青浦区动物疾病控制中心,上海201700;4.湖南农业大学。长沙410128)
摘要:目的为了建立一种快速、特异、灵敏检测动物源性食品中弓形虫的技术。方法根据原虫rDNA的部分
序列,找出弓形虫和新孢子虫共同保守DNA片段,设计套式PcR两对引物.以uhraPIl陀瑚基目组DNA快速提取试
剂盒提取弓形虫和新孢子虫DNA为
.初步建立了检测两种虫体的NestedPcR技术。将纯化的Ne蒯PcR产
物成功地克隆到pGEM·‰丛y载体中,经鉴定、测序并进行同源性分析。结果Nested—PcR的外、内引物时两种虫
体rDNA基因均能进行扩增,长度分刺在800—900bp、400~500bp之间。内引物扩增DNA序列与套布的同种虫
体DNA序列同源性较高,弓形虫和新袍子虫分刺达99.1%、97.2%,但它们两者之间差异较大,同泺性仅为86.
6%。用软件寻找能区别两者基因序列差异的酶切住点,挑选内切酶进行RFLP实验,结果表明新孢子虫N岛州
pcR扩增片段能被Vspl酶切。同时进行该分子检测技术的特异性和教感性试验,实验证明该NestedPcR能对弓
形虫和新袍子虫rDNA基因进行特异性的扩增.而时其它原虫基因未能扩增出任何片段;该Nes‘ed—PCR能检测出
100十弓形虫速殖子/g猪肉。结论本实验建立N啊IedPcR检测方法不仅可用于检测动物性食品中弓形虫,而且
能明确区分弓形虫和新孢子虫。
关键词:弓形虫;新孢子虫;垂式PcR;食品检刹
中图分类号:S852.723文献标识码:A 文章编号:1005_0868(20∞)06·000l-07
ESTABLISHMENT0FNESTEDPCR-RFLPFoRDETECT矾G
ZDXDP酗SMrAGD?、7:DⅡINAND厦AL.DEI江VEDFooD
wANGQu粕。, wANGQi∞-qu衄2,PANshuouan’,cHENzhi—qiar曾
CHENYon90IlIl‘,CHANGXiao.bin4,UJiaⅡ‘
(1.轴删咖i%抛珈口ry鼬删n触出Ⅱ把,c^As,舶删曲瓜200232,‰;2.‰,神耐
西忉,一砒如咿曲n∞d0删妇Bm甜,5k哪耐200135,c^打m;3.Q打w凡c咖
加’A瓜md髓湖站c0刖一衄d胁n砌n,轴佣g^面201700,吼打坼;4.肌。,b帆
电睹础u陀踟矗哪母,“硼酽k410128,c枷m)
Abstract:obj硎veInordert06ndBf醅tspec迁icandsensitiveIIlokculemethodt0detectn啪zPkmdgo卅
以iIlt11eanimalf捌productB.Me恤ods111econ8eⅣ砒iveDNA姆mentof血e‰叩k啪GD,删明d血e
ⅣPnjPom血耐栅waBfound0utaccoldi“gtopart鸵quence0fproto日00nrDNA,twopa涵0fpdⅡ嘲jforNes把d
PcRweredesignedthentlleNestedPcRford帆tingtwopolypidewase袖ishedw汕山e‰叩knm踟以甜and
tlleⅣ瞰EPDm血n梳帅ltemplateswhichwereext瑚Ictedf南mthemusi“gtheUl曲f、lre懦genorneDNAfastexh_ac廿ng
kit.Thepu曲edNe札edPcRpfoduct马were暑ucce豳my山nedintothepGEM.T—e鹪yvector,恤nw帆eequenced
aTld锄alyzedhomogene叫s.Thee“巧mecutsitest}l砒eoulddj出“guishtwogene0rderdiⅡbfencew鹪卵archedby
收稿日期:2005—03—07
基金项目:上簿科委标准专项(05dz05011),国家质检总局科研项目(2006IK()07)。
作者简介:王权(1966一).男,江苏人,硕士,副研究员,主要从事家畜寄生虫病诊断技术研究。
万方数据
中国兽医寄生虫病 2007年11月
80nware。incisionemvmew粕choBedtornakeRFIPt鸵t.Res.1l协Theextm柚dintr0prime瑁t0NestedPCR
c叫ld枷pli矗catetwopolypiderDNAgene,andthelengthofeach啪plmcationhgmemwasbetween800一900
bp,400—500bp.Thehomolo科甜irItropnmerampli6ca垃蚰DNA∞quencew聃hi曲compa一“gwiththehomoge-
ne时polyPidewhichhadbee“publicated,a|ldt.1at0ftlle‰0PkM岛删h锄d肌咀妒。mchnin“mwererespec.
tivelyabove99.1%蛐d97.2%.Bu¨hedifIbrencebetweeⅡ‰Dp^鄙mdCD蒯缸andmmP0m∞nin啪w硒obvi.
ous,thehomologyofthemwBs帅ly86.6%.TheNeg£edPcR蛐plmcationfragment0f£heⅣe珊Pomc0耐础m
c叫ldbecutbyVsp1.11le砌唧kMcD础f舳dtIle肌n卵m如nin蜊rDNAge聃couldbespecinc锄p船cat_
edbytheNestedPCR,butotheopIotozooncoIlldIl’t.7rhismeIhodcoulddetectloo脚k砌GD砌f诅ch”oites
per1伊狮0fpork.Co眦I啷.0nneNestedPCRthates诅bishedinthis8tudycoulddetect龇‰opZ渊Go槲i
in蚰imal-derived删,me衄whilehc砌ddis6ngIlish%御k砌G0础faIldⅣeo∽m如nfn吼
Key舯rds:丁缸叩kmn函,删i;Ⅳ即jP唧C锄轨um;NestedPCR;RFLP;缸砌detecb帆
弓形虫病是由肉孢子虫科刚第弓形虫(‰o—
pk,mgo蒯i)引起的人畜共患性疾病,可通过多种
途径感染人,其中通过动物源性食品中包囊感染人
是重要途径⋯。新孢子虫病是由肉孢子虫科另一
种原虫新孢子虫(№甲ommninum)引起的多种动
物共患性疾病,牛、绵羊、山羊、马、鹿等均可为中间
宿主,其终末宿主是犬,该病主要造成孕畜流产、死
胎及新生仔畜运动神经障碍,对牛的危害尤为严
重‘圳。
由于两种虫体在形态、大小极为相似,在光学显
微镜下,若不进行免疫组织化学染色,难以区分刚第
弓形虫和新孢子虫,并且弓形虫和新孢子虫在组织
形成的包囊小,常规的镜检不易发现组织包囊。目
前国内外运用血清学检测食品中寄生虫的研究报道
较少,而目前我国新孢子虫病研究刚刚起步,还未研
制出血清学诊断试剂。PCR技术由于快速、特异性
强、灵敏度高的特点,已经被广泛运用于动物疾病诊
断及食品中病原体的检测,如大肠杆菌、沙门氏菌的
检测等。对两种虫体进行基因序列分析,发现弓形
虫和新孢子虫的18sRNA基因序列同源性非常高,
而rrs区域碱基序列同源性仅为80%,可根据rrS
基因序列设计引物进行Nested—PcR,希望敏感地扩
增出两者的基因片段,再寻找区别两者基因差异的
酶切位点,进行限制性内切酶片段长度多态性RFLP
(Res试ction蛔咖entkngthp01yTno呐ism)来区别虫
种。
由于弓形虫包囊内缓殖子数量不等(由几十到
几千),用单位食品中弓形虫速殖子数作为衡量分
子检测方法的灵敏度比以单位食品中包囊数量更科
学。因此本试验中将弓形虫速殖子加入肌肉中为模
型。建立研究检测动物源性食品中弓形虫Nested
PcR.RFLP的分子检测技术。
1材料与方法
1.1材料
1.1.1 虫株弓形虫虫株(RH株)、锥虫由中国农
科院上海兽医研究所液氮中保存提供;隐孢子虫、鸡
艾美尔球虫、牛球虫纯化后4。c保存;新孢子虫计
数灭活后一20。c保存。
1.1.2菌株和质粒大肠杆菌JMl09由本所实验
室保存;pGEM—T-easy克隆载体购自Pmmaga公司。
1.1.3实验动物昆明小鼠,18—22g,雌性,购白
上海复旦大学实验动物中心
1.1.4主要试刺uniq—lo柱式DNA琼脂糖回收
试剂盒、TaqplusDNA聚合酶、DNAMark购自上海
生工生物技术服务有限公司;dNTP、琼脂糖、琼脂粉
购自华美生物工程有限公司;T4DNA连接酶购自
Pmmaga公司;ul叽PIlre”基因组DNA快速提取试
剂盒购自上海赛百盛基因技术有限公司;蛋白酶K
购自MERcKKGaA(贮存液用ddH20配成20mg/
IIll)。
1.2 引物设计原虫rDNA序列包含5’一IGs—18s
rDNA-rrsl_5.8rDNA-rrS2-28SrDNA—IGS_3’根据
www.ncbinlIll.njh.gov的GenBallk上下载的弓形虫
rrsl_5.8rDNA一Ⅱs2(序列号:x75453)基因,找出弓
形虫和新孢子虫相同保守DNA片段,参照引物设计
原则,设计套式PcR两对引物,以期能扩增出弓形虫
利新孢子虫DNA片段,但扩增的序列有各自特异性。
外弓l物前5’-AccTITGAATcccAAGcA-3’,
外弓I物后5’-TAAATcGGACAAAcGccc·3’;
内弓I物前57一TrrGcArI℃AAGAAGcGTc一
37,内引物后5’一从GGTBccA7nTCCGTrc.3’o
1.3弓形虫虫体的复苏、扩增和纯化从液氮中取
山弓形虫RH株速殖子,于37。c左右复苏,以弓形
万方数据
第15卷第6期 王权等:动物源性食品中弓形虫Ne咖d·PcRRnP分子检测技术的建立
虫107速殖子/mL含量无菌操作腹腔接种健康昆明
系小鼠(18—22g)100只,每鼠0.2mL(约2x10。
虫体),2—3d后颈椎脱臼处死昆明鼠,用3—4mL
无菌生理盐水冲洗腹腔,收集冲洗液,3000r/min
离心10min,弃上清;沉淀用含0.25%胰酶生理盐
水于37oc消化处理45miIl,除去白细胞,3000r/
min离心10min;沉淀刚含O.84%氯化铵生理盐水
溶液洗涤3—5min除去红细胞,3000r/min离心10
min;沉淀用生理盐水洗涤2—3次,每次于3ooOr/
miIl离心lomin,收集沉淀即为速殖子,用PBs重悬
速殖子,储存备用。
1-4虫体的计数采用血球计数板对弓形虫进行
计数。计数公式:四大格内弓形虫平均数/4×104
即为每毫升含弓形虫数量。
1.5弓形虫标准阴性肉样的制备购买1.5月龄
小猪隔离饲养,每隔1个月采血1次用弓形虫PAPs
快速诊断试剂和弓形虫间接血凝诊断试剂检测,结
果均为阴性,屠宰后取肉压片镜检为阴性,该猪肉为
标准阴性样品。
1.6弓形虫、新孢于虫Nested-PcR检铡技术
1.6.1 日形虫、新袍子虫速殖子基因组DNA的提
取取记数好的含弓形虫、新孢子虫虫体稀释液,离
心取沉淀加入2mL蛋白酶K缓冲液和蛋白酶K,使
蛋白酶K终浓度200彬mL,50。c水浴3—4h,并
不时摇匀。用ultraPure“基因组DNA快速提取试
剂盒提取虫体DNA。具体步骤如下:取消化后的样
品o.5mL,加入1mLGN结合液,颠倒混匀,将混合
液小心转入离心纯化柱,静置至少3min。13000r/
IIlin离心30s,倒掉收集管中的废液,用o.5mL漂
洗液洗2—3次,13000r/min离心30s,将漂洗完毕
的离心纯化柱再离心1IIlin,彻底去除残留漂洗液,
将离心纯化柱套人一个干净的1.5mL离心管中,开
盖放置2~3111in使漂洗液挥发,加入50uLTE缓冲
液于硅胶膜上,静置2min后13000r/IIlin离心1
IIlin,离心管中收集的液体即是洗脱下来的基因组
DNA,储存备用。
1.6.2Nested.PcR扩增反应用FaqMix代替普通
PcR反应体系中反应bu腩r、dN佃、1铀酶,使加试
剂步骤减少。
依次向PcR反应管中加入灭菌双蒸水19止、2
xThqMix25斗L、50Ⅱ咖L/L外弓I物各l斗L、DNA模
板4灿混匀离心数秒,在PcR仪上反应,94。c预
变性5min,然后94。c50s、60。c40s、72oC45s
共进行30个循环,最后72℃延伸lOmiⅡ,初始PcR
完毕,取反应产物用双蒸水l:500稀释后作为第二
次PcR的DNA模板,在PcR反应管中加入DNA模
板2止灭菌双蒸水9.5止、2×TaqMix12.5止、50
n·m0L,L内引物各l止,按初始PcR反应条件进行
扩增,产物进行琼脂糖电泳观察。
1.7 PcR产物DNA片段的纯化、克隆、重组质粒
的鉴定 以DNA琼脂糖回收试剂盒回收扩增的
DNA片段,将回收的DNA片段按说明书与pGEM-
T-easy克隆载体相连,并转化EcD拓JMl09感受态
细胞,然后取转化好的菌液按常规方法涂布于加有
Amp+IP,rG+x·gal的LB固体培养基上,倒置平皿,
37。c温箱中培养16—24h,进行兰白斑筛选。
煮沸法快速检测质粒,挑取几个白色菌落,分别
置于含Amp的4mLLB液体培养基中37oc摇床培
养过夜,取1.5mL置于离心管中4oC12Ooog离
心lmin,去上清,加入350斗L蒸馏水,100℃水浴5
min,同上离心取上清,用内引物为引物对重组质粒
进行PcR鉴定。
1.8测序及序列分析将经PcR鉴定的弓形虫、
新孢子虫基因重组质粒送上海申能博彩生物技术有
限公司测序。并将测出的基因序列与NcBI公布的
弓形虫和新孢子虫的基因序列进行核苷酸的同源性
分析。
1.9 弓形虫和新孢子虫的RFLP酶切鉴定反应
对所测得的序列进行比对分析后,应用DNAm”辅
助软件,分别找到弓形虫和新孢子虫合适的酶切位
点,拟选内切酶。以DNA琼脂糖回收试剂盒回收扩
增的DNA片段,分别对未纯化的Nested-PcR扩增
产物的DNA片段和纯化的DNA片段,进行酶切。
1.10Nested·PcR敏感性实验取记数好的含弓
形虫的小鼠腹水用生理盐水梯度稀释,将稀释液加
入1g弓形虫阴性肉样中,使每克肉样分别含101,
102,103,104,lo’个弓形虫,加入2mL蛋白酶K缓
冲液匀浆,取匀浆液加入白酶K,使蛋白酶K终浓度
200一mL,50。C水浴3~4h,并不时摇匀,取消化
后的混悬液O.5mL,用ultraPLIre俅基因组DNA快速
提取试剂盒提提取弓形虫DNA模板,然后进行Nes—
ted.PcR反应。
1.1l№sted·PcR特异性实验以弓形虫和新孢
子虫为阳性对照,采用1.6.1方法分别提隐孢子虫、
鸡艾美尔球虫、牛球虫、锥虫DNA,按同上的条件进
行Nested-PcR反应。电泳分析PcR扩增产物。
2结果
2.1 弓形虫和新孢子虫PcR扩增结果结果见图
万方数据
中国兽医寄生虫病 2脚年11月
l用外引物对弓形虫和新孢子虫模板DNA进行扩
增,均能扩增出一条较亮的DNA条带.长度为80D
一900bp,扩增出新孢子虫DNA片段比弓形虫长,
与预计扩增片段长度相一致。内引物分别对弓形虫
和新孢子虫初始PCR产物的稀释液再进行PCR扩
增,均能扩增出一条DNA条带,长度在400一500bp
之间,新孢子虫DNA条带长度明显大于弓形虫。
匾t弓形虫和新孢子虫内、外弓I物扩增结累
ng.1R嘲№时丘嘣、s咖ⅡdPcR哪plm曲n蚰to
DNAfr佃刚er山啪teriak
1.DL—2000DNAMark酣;2.弓形虫外引物扩增产物;3.新
孢子虫外引物扩增产物;4.弓形虫内引物扩增产物;5.新
孢子虫内引物扩增产物;6.空白对熙
1.DL.2000DNAMarker;2.‰砷km驴r出矗mPcR;3.
MD^Pom删“,啪I6呲PcR;4.Z,|I,Ph,舯l和蒯融蚰d
PcR;5.№;M;∞nfmm‰dPcR;6.ne斟ivecont同
2.2弓形虫和新孢子虫基因重组质粒的PCR鉴定
用内引物进行PcR鉴定,从图2、图3可见:对弓形
虫和新孢子重组质粒用内引物均能扩增出一条长度
在400—500bp之同的DNA片段,表明DNA片段均
已连接到pGEM-T.e8sy载体中组成了新的质粒。
圄2弓形虫基因重组质粒的PcR电津国
M.Marker:1.弓形虫;2.空白对照
Fig.2R因小ofBgaro辨gelelecjrophores量slden吐矗曲6蚰0f
霸,I:孥l聊,;口g肼幽fr洲Ar鲫mbi尬ntpJ酬dby
PCR
M.Mark盯;1.乃】。Zph脚g帆蹦;2.n。g“veomltml
图3新孢子虫基因重组质粒的PcR电泳田
M.Marl【er:1、2.新孢干虫;3.空白对照
ng.3R酬t0fa驴r岫e粤dekdmpbo啷js坩明“矗曲ti佃0f
He惦呻憎calli硼mrDNAre∞mbI蚰眦pl|蚌mjdby
PCR
M,Mark盯;l、2.服。胖啊埘dn啪;3.“e晷Btive咖州
2.3铡序结果将经过PcR鉴定的刚往克隆产物
送北京奥科生物技术有限公司上海分公司测序,弓
形虫、新孢子虫Nested.PcR扩增DNA片段测序结
果见图4的seql’、seq7’,两者长度分别为433bP、
463bp。
2.4弓形虫和新孢子虫所测基因片段的序列与公
布的相关序列比对seql+为本试验所测的弓形虫
内引物扩增序列,∞q2为r90以i咖incn.
AJ628254.1,seq3为zgo础is恤illP.x75453.1,
seq4为Z90础istrainRH.x75429.1,seq5为m'椰一
P0m∞nin“m,”q7’为本试验所测的新孢子虫内引物
扩增序列。经比对分析(具体见图4、图5):seql、
seq2、∞q3、seq4序列同源性较高,达99.1%以上,均
为弓形虫序列,*q5、seq7’同源性较高达97.2%,均
为新孢子虫序列,而弓形虫与新孢子虫同源性为
83.3%~88.8%。
2.5RnJ酶切鉴定反应结果酶切位点分析:经
比对分析,新孢子虫序列在162一168为A.rrAAT,
为V8pl酶切位点,弓形虫相对应位置为ATrCGT,
非该酶酶切位点。
2.5,l 弓形虫和新孢子虫基因片段酶切结果在
PcR离心管中分别加入未纯化和纯化的的Nested—
PcR扩增的DNA片段8.0“L,再依次在各管中加
入10xbu‰r2.O¨L、酶Vspl1.O止、灭菌双蒸水
9.0曲,37。C水浴90IIlin,电泳后观察结果,从图6
可见,没有加酶的弓形虫PcR扩增产物只出现一条
带(泳道1),加Vspl酶的弓形虫PCR扩增产物电
泳后只出现一条带(泳道2);新孢子虫PcR产物直
接酶切(泳道3、4)出现两条带,新孢子虫PcR产物
万方数据
第15卷第6期 王权等:动物源性食品中弓形虫Ne删·PCRRFLP分子检测技术的建立
三三三』』j!』'三三』_里』-!土二』_星_!{』』1曼j_堡』』』二一;_二=-=二二二-=_=二‘_二_=一=‘_=二_:-=-二‘_=1三一蔓』j_!j』.!—鲁‘邺1耳
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二三-三二工三二三三三一!上二三一£二』』』{_!_£』上』』上_璺土j立』上-!_£』-三一!_!{三立三二三三土!二三一111_!_£』』_£』三阜“,“ic!
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盼;:::::::::::;::::::::::::::;;;::::;::::;:::::::;:;:::;::::黔船::臻
口;;:;二;南:::;由:::::;:;:岢:南:怖;;:::南;:伟:声::::;:;南::南:;;;王三嚣::::;:;::k三!_生!—=型t垃土三££苎_£_LL生!_£—!旦⋯U口【£I吡卫_!旦土划。I!剑一睦』‘旦皇_生L2—§三|8i!型cI王£_!—!型'r州山恤~·’
三工三三土二旦_!-三一呈生旦上土生三!_!_旦拿二£!_旦£生生王!_譬L££三一呈一!-L生L;二-三王兰三生生三生}三一生王!_王L£量!—;血j“把!
孔70 21蚰 2170 z:!o 2:jo 2i∞『丁F}r●rf,frfrrf●r亍_r}亍_产rrrrrf=rfrf彳_rr亍-frr,·,rr亍_rr亍_r宁frff亍_=rrr斤圳刚t《¨
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l⋯三‘?三Ⅲ⋯三·一蛆c⋯⋯⋯7丘⋯^c’^^^一-T▲⋯T6t1土77三⋯^r呲⋯州41tTelt^一17卜二TcT[IT^一IrclBcTr1⋯^T7l‘Icrllllcl^^‘惮^|:T▲T^▲T6T1loTT『cpl^▲r眦恤㈣c●5
I£.!一f童三】t拄_三一!_£—!—dt土三Irc【£三一工_!_!_£j』j玉—列^l£_£!J^l£!』土刖^1正!』_!_墨_苎_!_至—!—到7王工IcII_王土上王¨‘土亡恤≮·:
川;川川⋯Ⅲ川川⋯Tc▲tcL0▲tTt:Tc^J:⋯^^t#』c▲cfrT‘ccc■”’nq
∞,O 2,00 z,JO z,iO 20:O :3∞
Frr开百了7F芋_rrr开^1T丁fF订五T下FfF}rFrFfr囊百言r鼻^17rf两1TFF产【——二m。mcdI⋯⋯^●T川⋯⋯⋯r⋯Tr^r⋯⋯⋯⋯’cr^●^t4er●f⋯'1而㈣t1Pd
睢:;;::::;:;:;::;;:::;:::;::;:::::;:!;:::::::::;:堇;::;;;:::::::=:煳卜^1,⋯⋯⋯⋯川川⋯T亡^㈨⋯Tt-川^:o⋯⋯叫⋯⋯三盥“⋯1·4
bjj』二£旦皇!-!_!』』_!_三J——L王£三上』』_圭j一=王jJJ乙L生土三立j-=二』上2二』』上J—‘L重量£三一£』J.■附’‘”一4
图4所测的弓形虫和新孢子虫所测序列与N邙I公布其它株的Ⅱs115.8rDNA—11阳基因序列比较结果
FIg.4o帅砷nsion0fDIqA。eque噼№tectedlnth随g山dy哪reIatedsequ咖雌whichhadb钟Ⅱpubl妇ted
Pa℃nn甜酬i“
舞h甜甍 584B
8≯3
髓O
6
866
808
暑o 3
锄3
02
O2
02
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OO
0m
1l9
l56 1.!:-一
5 6
图s序列同源性分析的结果
Hg.5R嘲小0f辟que删eh喇ldo舒柚羽拶幻
注:l、2、3、4、5、6分别代表seql7、seq2、seq3、解q4、seq5、§eq7
未酶切直接电泳(泳道5)只出现一条带。说明仅新
孢子虫PcR产物能为Vspl酶切。
2.5.2新袍子虫DNA回收纯化和未纯化对酶切结
果的影响没有加酶的新孢子虫PcR扩增产物电
泳后只出现一条带(泳道1):加Vspl的新孢子虫
PcR扩增回收后酶切产物电泳后出现两条明显的
带(泳道2、3、4);额孢子虫PcR产物没有回收直接
酶切(泳道5、6、7)。从图6可以看出回收和没有回
收均能进行酶切,简化了实验程序,使R凡P技术具
有更好的实用性。
2.6 Negted·PcR敏感性实验结果分别对每克肉
样分别含lo‘.102,103,l矿,105个弓形虫进行N∞
tedPcR扩增,对后引物PcR扩增后的产物进行琼
脂糖凝胶电泳与DL-2000Marker进行比较,结果如
图8:每克肉样最低检测102个弓形虫。
2.6.1Nested.PcR特异性实验结果分别以提取
弓形虫、新孢子虫、隐孢子虫、柔嫩艾荚耳球虫、猪肉
孢子虫、牛球虫DNA、伊氏锥虫的DNA为模板,用
匿㈠箸|兰|窭|,
85磐}5
万方数据
中国兽医寄生虫病 20钾年11月
外引物进行初始PcR扩增,再以初始PcR产物的l
:500稀释液为模板,用内引物进行PcR扩增,扩增
产物经1%的琼脂糖凝胶电泳后观察,结果见图9,
NestedPcR能扩增山弓形虫和新孢子虫特定长度
DNA片段。而阴性对照隐孢子虫、柔嫩艾美耳球
虫、猪肉孢子虫、牛球虫、伊氏锥虫,均无扩增条带。
圈6弓形虫和新孢子虫RFLP酶切鉴定反应电泳结果
Fig.6Res螂c6∞map0fRFlLP啪mVspl
M:DL广2000M耵妇1:弓形虫PcR产物(不加酶)2:弓形虫
PcR产物(加V8pl酶)3、4:新孢子虫PcR产物(加vspl
酶)5:新孢子虫PcR产物(不加酶)
M:DL一2000M础erl:m鲫ivecon砌afz却bm卵捌f
2:,h叩kmgDn矗PcRWjthV叩13、4:№p蝴∞nin啪
PcRwi血V叩15:noganvec哪tml0fNe∞p啪caIIinum
围7新孢子虫RFLP酶切鉴定反应电泳结果
ng.7R嚣t—cdonmapofreo哪bInnIItpIa耵n柚
PGEM.T/18SrRNA’ri恤Vspl
M:DL.2000Markerl:%口I咖r4∞耐眦mPcR产物(不加酶不
回收) 2、3、4:m郴pom∞n轨埘lPcR回收产物加Vspl酶切
5、6、7:%口sp硝o∞H打ⅫⅡPcR产物不回收加Vspl酶切
M:DL枷MarI【盯l:ne删"con呻l2、3、4:胁呷omc觚扛
哪PcRwitllV8p15、6、7:M自9妒帆∞砌啪PcRwtihVBpl
3讨论
3.1在对食品中致病性微生物检测中,唯病原学诊
断结果的可信度最高,弓形虫检测当不例外。但是
用传统病原学检测方法检测动物源性食品中弓形虫
存在很大困难,原因在于动物食品样本中往往虫数
围8弓形虫基因扩增敏感性结果
F.g.8R姻uH0fs∞仰d·PcR枷pI墒∞d锄to脚如sM
和础iofdeff啾ntdiIutedde砌ty
M.DL_2000Marker;1.10,;2.104;3.103;4.102;5.10
图9弓形虫和新孢子虫基因内引物扩增特异性结果
Fi晷9R鹤llnofN船ted-PCR帅pn五ca虹蚰t0
DNAf唧辨vermmate—aIs
M:DL.2000DNAMark盯1.弓形虫2.新孢子虫3.穗孢
子虫4.柔嫩支蔓耳球虫5.牛球虫6.伊氏锥虫7.
j9i性对照
M:DL栅DNAMarl【er1.脚km4驴础i2.№oEP0m
∞m心m3.C删ogP∞诚啪4,E枷e池5.Eh矗6,
蜥n哪omⅡerⅥ删7。ne斟ivecontmI
和包囊数不多,常规涂片镜检多为阴性;动物接种方
法不仅费时而且有些弓形虫弱毒株在感染实验动物
小白鼠后并不能在腹水中检测出大量虫体或引起死
亡;体外接种于培养细胞,增虫后再观察,不失为一
种好的替代方法,但可操作性差。此外,弓形虫和新
孢子虫在形态、大小极为相似,并且在牛肉等动物源
性食品可同时存在,这就需要高灵敏度、同时又能区
分两种虫体的新检测技术。
3.2为此,本次试验探索建立了动物源性食品中弓
形虫Nested.PcR检测方法。在GenBank上下载了
弓形虫和新孢子虫的序列.通过BLAsT比较后,发
现弓形虫18sRNA和新孢子虫的同源性非常高,而
rrS区域碱基序列同源性仅为80%,在rrsl利Ⅱs2
区段找出弓形虫和新孢子虫共同具有的保守序列,
万方数据
第15卷第6期 王权等:动物源性食品中弓形虫N鄂ted—PcRRnp分子检测技术的建立
根据引物设计原则,设计出能同时扩增出弓形虫和
新孢子虫DNA片段的引物,再根据内引物之间序列
差异,运用软件找能区别两者基因序列差异酶切位
点,挑选酶进行RFlJ实验,以期建立快速、灵敏、能
区分虫种的Ne咖dPcR.RnP检测方法。对本试验
用的弓形虫和新孢子虫株进行Nested—PcR.扩增
DNA片段经测序及序列分析,结果表明检测的DNA
序列与公布的虫种DNA序列同源性较高,弓形虫和
新孢子虫分别达99.1%、97.2%。而两种虫体DNA
序列差异较大,同源性仅为86.6%,说明通用引物
能有效地扩增出两种虫体的目的DNA片段。PcR
检测弓形虫敏感度与检测样品性质有较大关系,
Gucy等”1对弓形虫rDNA的敏感性进行测定,发现
直接扩增一个弓形虫速殖子的裂解液很容易观察到
特异扩增条带,进一步模拟临床样品,将不同稀释度
的速殖子分别与不同量的人成纤维细胞混合后扩
增,结果发现10个速殖子在含量高达105人成纤维
细胞.或1个速殖子在含量达104人成纤维细胞背
景DNA的影响下能检测到特异的弓形虫DNA。本
试验结果可检测到每克肉样l×102个弓形虫水平,
表明此Ne8ted-PcR方法敏感度高比普通PcR高,
但仍可探索从样品采集、模板提取、PcR扩增模板
添加量等因素来提高Nes£ed-PcR方法检测食品中
弓形虫的灵敏度。特异性试验结果表明该检测方法
能特异地扩增出弓形虫和新孢子虫DNA片段,对其
它原虫则不能。同时仅新孢子虫Ne暑ted-PcR扩增
产物能被Vspl酶切,而弓形虫扩增产物则不能被
Vspl酶切,扩增产物经酶切后电泳观察与仅根据扩
增反应DNA片段长度(新孢子虫比弓形虫长30
bp)比较,更能明确区分弓形虫和新孢子虫。
本试验所建立NestedPCR.RFLP已成功检测弓
形虫弱毒株感染小白鼠的脑、肌肉及宰前血清学刚
性的猪肉中的弓形虫,结果阳性符合率较高,表明
该检测技术具有实际运用价值,具体结果文章另发
表。
参考文献:
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万方数据
动物源性食品中弓形虫Nested PCR-RFLP分子检测技术的建立
作者: 王权, 王巧全, 潘淑娟, 陈志强, 陈永军, 常小斌, 李健, WANG Quan, WANG
Qiao-quan, PAN Shu-juan, CHEN Zhi-qiang, CHEN Yong-jun, CHANG Xiao-bin, LI
Jian
作者单位: 王权,陈永军,WANG Quan,CHEN Yong-jun(中国农业科学院上海兽医研究所,上海,200232),
王巧全,李健,WANG Qiao-quan,LI Jian(上海出入境检验检疫局,上海,200135), 潘淑娟
,PAN Shu-juan(上海市青浦区动物疾病控制中心,上海,201700), 陈志强,常小斌,CHEN
Zhi-qiang,CHANG Xiao-bin(湖南农业大学,长沙,410128)
刊名: 中国兽医寄生虫病
英文刊名: CHINESE JOURNAL OF VETERINARY PARASITOLOGY
年,卷(期): 2007,15(6)
被引用次数: 2次
参考文献(6条)
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6.于恩庶;徐秉锟;林继煌 弓形虫病学 1992
引证文献(2条)
1.陈永军.王权.蒋蔚.刘迎春.荆振宇.闫叶娜 上海市猪弓形虫流行病学调查[期刊论文]-中国动物传染病学报
2010(5)
2.龚国华.周锦萍.孙泉云.刘佩红.王权 上海市宠物门诊犬弓形虫病流行病学调查[期刊论文]-中国动物传染病学报
2009(4)
本文链接:http://d.g.wanfangdata.com.cn/Periodical_zgsyjscb200706001.aspx