磷酸钙转染法
磷酸钙转染法
材料:
质粒 DNA
指数生长的真核细胞
2 M CaCl2
2×HBS (pH 7.05)
配方:
2×HBS (pH7.05):900 ml超纯水中加入 NaCl 16.3 g, KCl 0.74 g, Na2HPO4 0.214
g,Glucose 2.4 g和 HEPES 10 g,调 pH至 7.05,定容至 1 升,过滤(0.2 μm滤
膜)后储存于 4℃备用。
方法:
1. 细胞分盘: 通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以 1×105至 4×105
细胞/cm2的密度平...
磷酸钙转染法
:
质粒 DNA
指数生长的真核细胞
2 M CaCl2
2×HBS (pH 7.05)
:
2×HBS (pH7.05):900 ml超纯水中加入 NaCl 16.3 g, KCl 0.74 g, Na2HPO4 0.214
g,Glucose 2.4 g和 HEPES 10 g,调 pH至 7.05,定容至 1 升,过滤(0.2 μm滤
膜)后储存于 4℃备用。
方法:
1. 细胞分盘: 通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以 1×105至 4×105
细胞/cm2的密度平铺细胞于 60 mm组织培养皿上(根据实验需要选择培养皿,
使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 40-70%)。将细胞置于含 5%
CO2的 37℃温箱中孵育 8-24 h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前 2 h换
液(用 4 ml新鲜的完全培养基置换旧的培养基)。
注:为得到较高的转染效率,尽量使用指数生长的细胞,转染时细胞的密度不
超过 80%。
2. 制备磷酸钙-DNA沉淀:以 60 mm组织培养皿用 500 μl反应总体积为例。在
灭菌水中加入质粒 DNA(总量 4-10 μg为佳),再加入 31 μl 2 M CaCl2,使三
者总体积达到 250 μl,混匀。将等体积 2×HBS盐溶液逐滴加入,同时轻弹管
壁,使每滴加入后及时混匀。静置 2 min后,立即将这 500 μl的磷酸钙-DNA
悬液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀。
注:可以观察到滴入的部位培养基瞬间会出现浑浊的橘黄色,应尽快将其混匀,
避免形成过大的颗粒,影响转染效率。
3.若转染的细胞不用转染促进剂处理,则置于含 5% CO2的 37℃温箱孵育。8 h
后吸去培养基与 DNA沉淀,加入 5 ml 37℃预热的完全培养基,继续将细胞放
置温箱孵育,16-40 h观察其转染效率。
参考:分子克隆实验指南第三版(p1284~1285)
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