多酚氧化酶是一种含铜氧化酶,广泛存在于
自然界的植物当中,是引起水果、蔬菜褐变的主
要酶类[1,2]。在水果贮藏加工过程中,褐变作用会
严重影响水果的产品质量,它不仅影响产品的色
泽、风味,同时还破坏产品中的某些营养成分。所
以,如何在果蔬加工过程中控制其活性受到人们
的重视[3,4]。目前,国内外科研人员对多酚氧化酶
的活性问题已经进行了一些研究,现已研究的水
果种类有苹果[5]、冬枣[6]、无核白葡萄[7]、草莓[8]
等,已研究的蔬菜有马铃薯[9]、莴苣、茄子[10]等,
已研究的粮食有甘薯[11]、大豆[12]等。研究
明,不
同来源的多酚氧化酶作用的底物不同,氧化效果
不同,理化性质也有较大差异。在葡萄酒的酿造
过程中,多酚氧化酶可以引起葡萄汁和葡萄酒的
氧化,严重影响了葡萄酒的质量[13],对葡萄汁或
葡萄酒进行SO2处理,不仅可以逐渐破坏多酚氧
化酶,而且游离的 SO2还能抑制其活性。所以研
究葡萄酒酿造过程多酚氧化酶的活性变化,对葡
萄酒的酿造工艺有很大的借鉴作用。本实验主要
研究了红葡萄酒酿造过程中多酚氧化酶活性的
红葡萄酒酿造过程中多酚氧化酶的变化
李青青 1,何国庆 1,张艳芳 2
(1.浙江大学 食品科学与营养系,杭州 310029;2.西北农林科技大学葡萄酒学院,陕西 杨陵 712100)
摘 要:测定了用品种 8804葡萄为原料酿造葡萄酒过程中多酚氧化酶活性、致死温度、葡萄酒的 pH
值、游离SO2、总SO2的变化。试验表明:随着发酵的进行和SO2的加入,多酚氧化酶的活性由9.67U下
降到3.67U,致死温度由78℃下降到64.5℃,样品的pH值变化不大,游离SO2为抑制多酚氧化酶活性
的主要因素,pH对多酚氧化酶活性的影响很小。
关键词:红葡萄酒;多酚氧化酶;SO2;致死温度
中图分类号:TS262.6 文献标识码:A 文章编号:1001-7119(2007)05-698-04
ChangeofPolyphenoloxidaseDuringRedWineMaking
LIQing-qing1,HEGuo-qing1,ZHANGYan-fang2
(1.FoodScienceandNutritionDepartment,ZhejiangUniversity,Hangzhou310029,China;
2.CollegeofEnology,NorthwestSci-techUniversityofAgricultureandForestry,Shanxi712100,China)
Abstract:Inthispaper,thechangeofPolyphenoloxidaseactivity,thepolyphenoloxidaselethaltemperature,thepH
value,freeSO2,andtotalSO2werestudiedduringtheredwine(8804)making.Theresultindicatedthat:withfermentation
carryingonthepolyphenoloxidaseactivitydropsfrom9.67Uto3.67U;thelethaltemperaturedropsfrom78℃to64.5
℃;thepHvaluechangeslittleanditsinfluenceonthepolyphenoloxidaseactivitymaybeneglected.
Keywords:redwine;polyphenoloxidase;SO2;lethaltemperature
收稿日期:2006-08-21
作者简介:李青青(1982-),女,博士研究生,食品科学专业。
*通讯作者:何国庆,教授,博导。
Vol.23 No.5
Sep.2007
科 技 通 报
BULLETINOFSCIENCEANDTECHNOLOGY
第23卷 第5期
2007年9月
第5期
变化,初步探讨了酿造过程中加入 SO2对多酚氧
化酶活性的影响和各个阶段多酚氧化酶的致死
温度,目的在于为葡萄酒酿造中防止氧化,改进
工艺,提高葡萄酒质量提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 材 料
1.1.1 样 品
8804葡萄汁、葡萄酒,取于西北农林科技大
学葡萄酒学院实习工厂。
1.1.2 试 剂
pH6.0磷酸缓冲液,邻苯二酚 0.02mol/L(现
配现用),碘液0.09777mol/L,1%的淀粉指示液,
浓硫酸。
1.1.3 主要仪器
恒温水浴箱,高速离心机,752分光光度计,
25型pH计,冰箱。
1.2 实验方法
1.2.1 8804干红的工艺流程及所取样品(见图1)
1.2.2 酶液的制备
首先对取得样品进行过滤,滤液在 6000r/
min下离心5min,上清液即为多酚氧化酶的粗
提液。将上清液倒入具塞试管中,放入冰箱中低
温保存,制备好的酶液当天用完。
1.2.3 PPO活性的测定
采用 Coseteng速率法[2],取 6个 100mL的
三角瓶,在其中加入定量制备好的酶液,加入缓
冲溶液6mL,置于37℃恒温水浴中 15min,加
入邻苯二酚3mL,在10s内迅速放入分光光度
计中比色并记录数据,每隔 30s测一次,共测 5
min,测定波长为 420nm,不加酶液的反应液作
对照。在上述条件下,一个活性单位为每毫升酶
液在 1min内使 OD值升高 0.001(1U=0.001OD
值/(min·mL))。
1.2.4 酶液的用量试验
准备 5个三角瓶在其中分别加入 0.2、0.3、
0.4、0.5、0.6、0.7mL由样品 1提取的酶液。按
1.2.3的方法测定酶活性。选取酶活力最高的一
个酶液用量为本实验的酶液用量。
1.2.5 不同样品中多酚氧化酶的致死温度测定
分别测定 4个样品中多酚氧化酶的致死温
度(15min内酶活性下降到10%的温度),设7个
温度梯度,分别为 50℃、55℃、60℃、65℃、70
℃、75℃、80℃,按1.2.3的方法测定酶活性。
1.2.6 样品的pH值、游离SO2、总SO2的测定
先测定各个样品的 pH值,然后用直接碘量
法[14]分别测各个样品的游离SO2和总SO2。
2 结果与分析
2.1 酶液的实验用量
不同的酶液用量测得的酶活力见图2。
由图2可以看出,酶液用量为0.2~0.5mL之
间时酶活力基本保持不变,当酶液用量为0.6mL
时酶活力达到最大,再增加酶液用量酶活力反而
降低,基于实验目的是要使测得的酶活达到一个
图2 不同酶液用量的酶活力
Fig.2 TheeffectofconcentrationonPPOactivity
10.2
酶液用量/mL
酶
活
力
/U
0.8
8.8
9.2
9.6
10
9
9.4
9.8
0.3 0.4 0.5 0.6 0.70.1 0.20
李青青等.红葡萄酒酿造过程中多酚氧化酶的变化 699
科 技 通 报 第23卷科 技 通 报 第23卷
最大的水平,在以后的试验中,我们选取 0.6mL
为本试验酶液用量。
2.2 酿酒过程中多酚氧化酶的变化
不同样品多酚氧化酶的活力见表1。
由表中可知,随着酿酒过程的进行,多酚氧
化酶的活性逐渐降低。由样品 1到样品 2,酶活
力下降可能是因为装罐时加入的 SO2对多酚氧
化酶活性的抑制;由样品 2到样品 3,酶活力降
低可能是因为随着发酵的进行多酚氧化酶的活
性自然降低;由样品 3到样品 4,酶活力降低因
为发酵结束且又加入SO2。
2.3 各个样品的多酚氧化酶的致死温度
分别将四个样品置于不同温度下反应 15
min后,测多酚氧化酶活性,结果见图3。
由图3可知,不同样品 PPO的致死温度如
表2。
由表 2可知,随着发酵的进行,不同样品中
多酚氧化酶的致死温度逐渐降低,酶的热稳定性
逐渐下降。
2.4 样品的pH值、总SO2与游离SO2
由表 3可知,随着发酵的进行样品的 pH值
基本保持不变,可以排除其对多酚氧化酶活性的
影响。总SO2逐渐增加,游离SO2逐渐减少,说明
游离SO2在酿造过程中被消耗,验证了游离SO2
为抑制酶活性的主要成分的结论。
3 结 论
试验表明:随着发酵的进行和SO2的加入使
多酚氧化酶的活性由9.67U下降3.67U,说明在
葡萄酒酿造过程中添加适量 SO2有利于多酚氧
化酶活性的降低,其中游离 SO2为抑制酶活性的
主要成分。多酚氧化酶的致死温度由78℃下降到
64.5℃,在酿造过程中多酚氧化酶的热稳定性逐
渐降低。样品的 pH基本保持不变,对多酚氧化
酶活力的影响很小。
4 讨 论
1)在对葡萄进行机械破碎时,其组织暴露在
空气中,在酶的催化下,使多酚氧化为邻醌,再进
一步氧化聚合而形成褐色素或黑色素,使葡萄汁
液被大量的暴露在空气中而被氧化,为防止这种
情况可以先使用二氧化硫及亚硫酸盐对葡萄喷
洒处理。具体的使用量还需要根据原料的状况确
定,原料较新鲜的使用量较少,原料破损较严重
或有霉变情况的则需要加大使用量。李济权的研
究表明,硫代硫酸钠,柠檬酸,硫代硫酸钠,抗坏
血酸对PPO均有一定的抑制效果。我们可以在
葡萄酒酿造过程中添加柠檬酸,一方面可以抑制
PPO活性,另一方面还可以调整葡萄酒的 pH
样品编号 致死温度下的酶活力/U 致死温度/℃
1 0.967 78
2 0.633 75
3 0.533 72
4 0.367 64.5
表2 不同样品PPO的致死温度
Table2 Thelethaltemperatureindifferentsample
样品编号 pH值 总SO2/mg·L-1 游离SO2/mg·L-1
1 3.34 0 0
2 3.24 76.34 61.32
3 3.21 80.16 43.24
4 3.18 85.72 20.10
表34个样品的pH值、总SO2与游离SO2
Table3 pHvalue,totalSO2andfreeSO2indifferentsample
表1 不同样品中多酚氧化酶的活
Table1 PPOactivityindifferentsample
样品编号 △OD420 酶活力/U
1 0.029 9.67
2 0.019 6.33
3 0.016 5.33
4 0.011 3.67
700
第5期
值。另外,在葡萄酒中添加抗坏血酸不仅可以起
到抑制酶活性的作用,同时还可以为葡萄酒添加
维生素,增进葡萄酒的保健作用。
2)在白葡萄酒发酵过程中降低氧化作用除
了加入SO2进行抑制外,还可以使用惰性气体,
为了防止更多的氧介入,在葡萄汁或葡萄酒酒所
盛用的容器中预先充入 CO2,N2或 CO2和 N2的
混合物以达到隔绝氧气的目的。
3)本实验只是对 SO2对葡萄酒酿造过程中
多酚氧化酶活性的变化的影响进行了初步的研
究,至于在酿造中添加多少量的 SO2能对 PPO
活性达到最好的抑制效果,还需要以后的研究更
进一步的探索。
参考文献:
[1] MAYERAM.Polyphenoloxidasesinplants: recent
progress[J].Phytochemistry,1987,26:11-20.
[2] COSETENGMY,LEECY.Changesinapplepolyphe-
noloxisdaseandpolyphenolconcentrationsinrelationto
degreeofbrowning[J].JFoodSci,1987,52(4):985-
989.
[3] HALIMDH,MONTGOMERYMW.Polyphenoloxi-
dasesofdAnjoupear[J].JFoodSci,1984,43:603-605.
[4] SANTERRECR,CASHJN,VANNORMANDJ.
Ascorbicacid/citricacidcombinationsinthepressingof
frozenappleslices[J].JFoodSci,1988,53:1713-1715.
[5] 郝慧英,赵光鳌,徐岩,等.苹果中多酚氧化酶的性质
[J].无锡轻工业大学学报,2003,22(1):7-11.
[6] 宗亦臣,王贵喜,冯双庆.枣果实多酚氧化酶性质的研
究[J].林业科学,2003,39(3):45-47.
[7] 吴继红,蔡同一.新疆无核白葡萄多酚氧化酶特性的研
究[J].食品工业科技,2003,24(4):35-37.
[8] 孔繁东,姬德衡,孙浩,等.草莓中多酚氧化酶的研究[J].
大连轻工业学院学报,2000,19(1):48-50.
[9] 张洪,黄建韶.马铃薯中多酚氧化酶的酶学特性研究
[J].食品工业科技,2002,23(4):39-41.
[10]余华,周洪波,何龙海,等.茄子多酚氧化酶的酶学特性
研究[J].食品科学,2003,24(12):44-46.
[11]姜绍通,罗志刚,潘丽军.甘薯多酚氧化酶活性的测定
及褐变控制[J].食品科学,2001,22(3):19-22.
[12]李笑梅,马永强,王金凤.大豆多酚氧化酶、过氧化物酶
的酶学特性研究[J].食品科学,2001,22(6):32-35.
[13] 李华.葡萄酒工艺学(第二版)[M].西安:陕西人民出
版社,2000:109-111.
[14] 王华.葡萄与葡萄酒实验技术操作
[M].西安:西
安地图出版社,2000:121-122.
本文利用神经 MOS管设计了以三值为例的
多值D/A、A/D转换器,其中 D/A转换器的结构
简单,而且无需改变电路结构,只要增加输入栅
就可以实现不同基的D/A转换;A/D转换器是在
二值 A/D转换电路的基础上,利用表 1的三值
A/D转换器代码转换表得到的,所设计的电路与
同类多值 A/D转换器相比,它的面积较小,大大
降低了电路设计的成本和功耗。
参考文献:
[1] 阎石.数字电子技术基础[M].第四版.北京:高等教育
出版社,2001:456-492.
[2] MakotoSyuto,JingShen,KoichiTanno,etal.Multi-
InputVariable-ThresholdCircuitsforMulti-ValuedLogic
Functions[A].The30thIEEE.InternationalSymposium
onMultiple-ValuedLogic[C].Portland,Oregon,USA,
2000:27-32.
[3] 程玥,许军.神经元晶体管的研究进展[J].微电子学,
2004,34(3):231-234.
[4] YangYuan,GaoYong,YuNingmei,etal.Newapplica-
tionofneuron-MOSindigitalPWMgenerator[A].The
4thinternationalpowerelectronicsandmotioncontrol
conference[C].Xi’an,China,2004:1321-1324.
[5] 杨媛,高勇,余宁梅,等.神经元 MOS的特性分析[J].
西安理工大学学报,2004,20(1):49-53.
[6] YoheiIshikawa,SumioFukai.ANeuronMosvari-
ableLogicCircuitwithTheSimplifiedCircuitStructure
[A].2004IEEEAsia-PacificConferenceonAdvanced
SystemIntegratedCircuits[C].Fukuoka,JAPAN,2004:
436-437.
[7] A.MedinaSantiago,M.A.ReyesBarranca.Circuit
forLogical-binaryFunctionsUsingMOSFloating-gate
Devices[J]. The2ndInternationalConferenceon
Electrical and Electronics Engineering and XI
ConferenceonElectricalEngineering (CIE2005)[C].
MexicoCity,Mexico,2005:211-214.
[8] 张燕华,周选昌,曾跃武,等.一种新的多值A/D转换器
[J].固体电子学研究与进展,2001,21(3):241-245.
(上接第697页)
!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!
李青青等.红葡萄酒酿造过程中多酚氧化酶的变化 701