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瘦素与非酒精性脂肪性肝纤维化研究进展

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瘦素与非酒精性脂肪性肝纤维化研究进展瘦素与非酒精性脂肪性肝纤维化研究进展 国际消化病杂志2007~[E1旦箜!鲞箜塑坐!Q!!!!!!!:!!: 瘦素与非酒精性脂肪性肝纤维化研究进展 王亚东赵彩彦 ?367? ? 综述? 摘要瘦素是肥胖基因编码的代谢性激素,主要在白色脂肪组织特异表达,结合受体 后介导细胞信号 转导途径,通过调节肝脏问质细胞功能,调控转化生长因子[3(TGF—B),肿瘤坏死 因子a(TNF-a)等细胞因子 的分泌以及诱导胶原生成与降解失衡等,参与非酒精性脂肪性肝纤维化的发生发 展. 关键词非酒精性脂肪性肝纤维化;瘦素;转化生长...
瘦素与非酒精性脂肪性肝纤维化研究进展
瘦素与非酒精性脂肪性肝纤维化研究进展 国际消化病杂志2007~[E1旦箜!鲞箜塑坐!Q!!!!!!!:!!: 瘦素与非酒精性脂肪性肝纤维化研究进展 王亚东赵彩彦 ?367? ? 综述? 摘要瘦素是肥胖基因编码的代谢性激素,主要在白色脂肪组织特异表达,结合受体 后介导细胞信号 转导途径,通过调节肝脏问质细胞功能,调控转化生长因子[3(TGF—B),肿瘤坏死 因子a(TNF-a)等细胞因子 的分泌以及诱导胶原生成与降解失衡等,参与非酒精性脂肪性肝纤维化的发生发 展. 关键词非酒精性脂肪性肝纤维化;瘦素;转化生长因子 ResearchprogressoftheleptinandnonalcoholicfattyliverfibrosisWANGYa— dong,ZHAOCai—yan.Departmentoflnfec tion.theThirdHospitalofHebeiMedicalUniversity,Shijiazhuang(050051),China AbstractLeptinisakindofmetabolichormoneencodedbyobesegeneinblancadiposetissue.Afterbindingwithitsre— ceptors,leptincouldproducebiologicaleffecttOpromotethedevelopmentofnonalcoholicfattyliverfibrosisthroughsignal transductionpathway,suchasregulatinginterstitialcellsfunction,enhancingexpressionofcytokines,unbalancingtheproduc— tionanddegradationofcollagenandSOon. KeywordsNonalcoholicfattyliverfibrosis;Leptin;Transforminggrowthfactor 瘦素(Leptin)又称脂肪抑素(adipostatichor— mon),是1994年首次通过定向克隆技术成功克隆 的一种代谢性激素-1],由肥胖基因(obgene)编码, 白色脂肪组织产生,入血后游离或与瘦素结合蛋白 结合,分布到全身组织,参与摄食行为和能量代谢 的调节.近年来瘦素在肝纤维化形成过程中的机 制愈来愈受到关注,但尚未完全明确.本文就瘦素 在非酒精性脂肪性肝纤维化发病机制中的研究进 展作一综述. 1瘦素与瘦素受体 . 人类ob基因位于第七号染色体q31.3位点上长约20kb,含3个外显子和2个内含子,编码4. 5kbmRNA,进而翻译成一种由167个氨基酸组成 的多肽2],分泌入血时去除其N端由21个氨基酸 组成的信号肽,形成含146个氨基酸残基的活性瘦 素,与载体蛋白结合分布于全身,调节机体代谢. 瘦素受体(ob—R)为一跨膜结构,属于I型细胞 因子受体家族.根据细胞内片段长短不同分为瘦 素长受体(ob-Rb),短受体(ob—Ra,ob—Rc,ob—Rd, ob—Rf)和游离型受体(ob—Re)等6种异构体.其 中ob—Rb为最主要的功能受体,在下丘脑弓状核, 腹背内侧核等核团高度表达,通过调节神经肽一Y, 影响机体的摄食行为.既往认为,短受体分布广 作者单位:050051河北医科大学第三临床医院感染科 泛,但缺乏胞内信号转导功能,近来研究表明短受 体同样可介导一定的信号转导,且在外周组织中分 布,呈选择性高表达.在肝脏中ob-R主要分布在 肝细胞和活化的肝星状细胞(HSC),库普弗细胞 (KC),窦内皮细胞(SEC),参与多种细胞因子的调 控,影响非酒精性脂肪性肝纤维化的发生. 2瘦素的信号转导途径 经典的瘦素信号转导途径为Janus酪氨酸激 酶/信号转导与转录激活因子(JAK/STAT)途径, 当瘦素与ob—R结合后,ob—R二聚体化,激活和增补 多种JAK激酶一STAT磷酸化,磷酸化的STAT 形成二聚体转入核内,识别并结合到启动子区的活 化序列或相关序列,调控瘦素相关基因的转录乜]. Saxeua等[3]发现活化的HSC能够表达ob— Rb,与瘦素结合后通过JAK/STAT途径介导瘦素 信号转导.活化的HSC还大量表达瘦素mRNA和 蛋白,通过自分泌促进自身活化,参与肝纤维化的 发展. 另外,瘦素的信号转导途径可能还包括Ras— Raf—MEK,MAPK途径和磷酸肌醇3激酶(PI一 3K)途径等J. 3瘦素与非酒精性脂肪性肝纤维化 瘦素作为一种脂源性"脂肪调节激素"调节机 体脂质代谢,其生理作用主要通过抑制食欲,减少 能量摄入,增加能量消耗和抑制脂肪合成来稳定机 ?368?国际消化病杂志2007年10旦箜!鲞箜塑!』旦!:Q!!!!!!:!!: 体脂质代谢.另外,瘦素通过调控磷酸烯醇式丙酮 酸羧激酶(PEPCK)基因的表达,抑制丙酮酸羧激酶 活性,减少甘油三酯合成,影响肝脏脂质代谢.同 时,还通过蛋白激酶A激活肉毒碱脂酰转移酶促进 脂肪代谢.当瘦素或其受体功能异常时,瘦素不能正常发挥作用,拮抗胰岛素诱导的PEPCK下调,抑 制胰岛素受体底物(IPS-1)磷酸化,改变肝细胞胰岛 素受体后信号转导,促进胰岛素抵抗,增加肝脏脂 肪沉积,引起脂肪变.此外,瘦素还可选择性增强 KC分泌TNF一0t,IL一6等炎性因子促进肝细胞变性 坏死,HSC活化及肝脏脂肪沉积,诱发肝纤维化的 发生. Potter等_5]利用曼氏血吸虫感染ob/ob小鼠诱 发肝纤维化,发现ob/ob小鼠组与正常组均发生纤 维化,但oh/oh小鼠组纤维化程度明显轻于对照 组,而应用瘦素后纤维化程度增高,分泌的TGFt3. 含量增加,提示瘦素缺乏可减少肝纤维化的发生, 推测瘦素的作用很可能是通过TGFt3介导发生肝 纤维化.Leclercq等]发现瘦素缺乏的ob/ob小鼠 脂肪肝没有发展成纤维化,但给小鼠补充注射外源 性瘦素至生理水平,则发生肝纤维化,al(工)型胶原 增生,提示瘦素是肝纤维化发生必不可少的因素. 4瘦素与肝间质细胞 4.1瘦素与肝星状细胞(HSC) HSC活化是肝纤维化发生发展的中心环节,研 究发现活化的HSC中可表达瘦素及其功能性受 体.Potter等[5]发现大鼠HSC体外培养增殖2周 后,即可表达瘦素mRNA及蛋白.Honda等[7在 体内实验中也证实活化的HSC可以生成瘦素,他 们还利用硫代乙酰胺(TAA)创建肝纤维化模型,发 现ob/ob小鼠肝结构正常,无纤维化发生,而对照 组肝纤维化明显,瘦素与TAA合用于ob/ob小鼠 后,也出现明显肝纤维化,提示瘦素可能通过诱导 HSC活化,促进肝纤维化的形成. 在瘦素激活HSC致纤维化过程中,多数学者 认为其机制在于瘦素参与调节HSC表达细胞因子 及胶原的表达.Saxena等?用核酸保护分析法证 明活化的HSC可表达瘦素受体,当瘦素与特定受 体结合后,诱导al(工)型胶原启动子的活性,上调 mRNA表达,促进蛋白质合成,在肝纤维化过程中 发挥重要作用. 此外,Ikejima等]研究证实,HSC分泌的瘦素 还作用于其他肝间质细胞,促进TGFt3表达,后者进 一 步激活HSC促进肝纤维化的发生,此为瘦素分 泌的旁分泌环,并由该瀑布效应促进肝纤维化的发 生发展过程. 4.2瘦素与库普弗细胞(KC) KC在肝脏炎症及纤维化反应中起关键性介导 作用,活化后一方面合成释放IL一1,I6等炎性因 子,加重肝脏炎症反应,启动肝纤维化;另一方面分 泌TNF-a,血小板衍生生长因子(PDGF)等,激活 HSC等间质细胞产生大量TGFt3,,并促进细胞外基 质(ECM)的合成和沉积,抑制其降解,导致肝纤维 化形成.Ikejima等_1..通过RT-PCR法检测体外培 养的KC中ob—RbmRNA的表达,发现瘦素能增加 KC中AP一1DNA的结合活性及TGFt3mRNA水 平,表明KC表达功能性瘦素受体,且瘦素可上调 KC中TGFt3基因的表达,成为瘦素促肝纤维化作 用的靶细胞. Sakaida等_11_通过猪血清诱导Zucker(fa/fa) 大鼠肝纤维化并与对照组(fa/一)比较肝纤维化程 度,发现对照组在注射猪血清8周后出现肝纤维化, 而Zucker大鼠纤维化程度极轻微,羟脯氨酸含量, al(工)型胶原mRNA和a—SMA表达很低.从大鼠 肝脏中分离出KC,给予脂多糖处理并监测脂多糖 的吸收和TNF的产生量,结果显示,实验组KC中 LPS的吸收与TNF的产生量明显低于对照组,故 认为瘦素受体缺乏可通过影响KC的功能延迟肝纤 维化的发生发展. 4.3瘦素与窦内皮细胞(SEC) SEC对肝细胞有保护作用,在一定条件下,又 参与肝细胞损伤及纤维化的形成,尤其在肝纤维化 ,PDGF,TGF—J3 初期,SEC可产生E?一A纤连蛋白 等促进HSC活化增殖,同时产生纤溶酶原激活物 抑制剂,使ECM降解减少,对肝纤维化的发生起重 要作用.Ikejima等[1体外培养大鼠SEC发现, SEC可表达ob—RbmRNA,同时通过Northern杂 交法检测发现,在瘦素的作用下SEC中TGF—jam RNA的表达明显升高.这提示瘦素可能通过SEC 表达强力致肝纤维化因子TGF—J3,发挥其在肝纤维 化中的作用. 5瘦素与肝纤维化细胞因子 5.1瘦素与转化生长因子(TGF-~3) TGF—p是肝纤维化过程中的一个关键因子,肝 损伤时,间质细胞可通过自分泌或旁分泌的方式产 生大量TGF一.].动物实验证实,肝损伤后TGF- pmRNA表达上调.在非酒精性脂肪性肝纤维化 中TGF—p主要与SEC,KC活化有关.TGF-13可上 调HSC对工,?,?型胶原,纤维连接蛋白及蛋白 多糖的表达,并促进HSC向肌成纤维细胞转化,促 国际消化病杂志2007年10月箍!鲞箜塑!!!!!!!!!!!:!!: 进ECM合成,同时TGF一还抑制MMPS合成,促 进HSC分泌TIMP,抑制ECM降解.Honda等 发现ob/ob小鼠用TTA处理后不发生肝纤维化, 但是如果补充瘦素至生理水平后再用TTA处理, 该小鼠就会出现明显的纤维化,并且肝内a1(工)型 胶原mRNA,TGF一8,水平均显着提高,也证实瘦 素能促进TGF一8生成而促进肝纤维化形成.这些 模型均提示瘦素通过上调TGF一,在肝纤维化发生 发展中起重要作用. 5.2瘦素与肿瘤坏死因子(TNF—a) TNF—a主要由单核一巨噬细胞产生,作为一种 炎性介质与其他细胞因子如TGF一,PDGF及IL一1 等形成调节网络,参与肝纤维化的发生发展.特别 是在肝损伤早期,瘦素可通过提高TNF—a水平放大 炎症反应,独立诱发肝纤维化形成发展.Ikejima 等[1给雄性C57B1/6小鼠腹腔注射CCL4并同时 腹腔注射重组小鼠瘦素,结果显示TNF—a水平明显 高于单纯注射组,a1(工)型胶原mRNA,TGF一8 mRNA在肝脏中的表达亦明显增高,表明CCL4和 瘦素同时注射可加重小鼠急性肝损伤的炎症坏死, 诱发肝纤维化. 5.3瘦素与过氧化物酶体增殖物激活受体 过氧化物酶体增殖物激活受体(PPAR)是脂肪 细胞分化的一类重要核转录因子,在抑制炎症反 应,调节脂质代谢等方面发挥重要作用.在肝脏 PPAR—a表达最丰富,亦少量表达PPAR一7.PPAR 被配体激活后,抑制HSC增殖活化和a1(工)型胶 原mRNA的表达,延缓肝纤维化的发生[1.最近 有研究发现,瘦素通过诱导PPARa表达增加,促进 脂肪酸的氧化利用,减少脂肪酸的合成.反之, PPAR表达增加或活性增强通过抑制ob基因启动 子,在转录水平下调ob基因的表达,减少瘦素的合 成,降低血清瘦素浓度.动物模型亦显示PPAR7 活性缺失的小鼠血清瘦素浓度显着升高. 6小结 总之,瘦素正在逐步被人们认识,它作为一种 促纤维化因子,与受体结合后通过JAK/STAT通 路增强TGF—B,a1(工)型胶原表达.有关瘦素与肝 纤维化发生机制的关系尚未完全明确,且有相佐的 实验报道,而通过对非酒精性脂肪性肝炎(NASH) 患者的观察研究,可明确瘦素水平与肝纤维化之间 的可能关系,但瘦素是否为脂肪性肝纤维化的必须 ? 369? 因素,尚需大量的研究工作才能得以证实. 参考文献 1ZhangY,ProencaR,MafeiM,eta1.Positionalcloningofthe mouseobesegeneanditshumanhomologue.Nature,1994, 372:425—431 2AhimaRS,FlierJS.Leptin.AnnuRevPhysiol,2000,62: 413—437 3SaxenaNK,IkedaK,RockeyDC,eta1.Leptininhepaticfi— brosis:evidenceforincreasedcollagenproductioninstellate cellsandleanlittermatesofob/obmice.Hepatology,2002, 35:762—771 4LangT,IkejimaK,YoshikawaM.Leptinfacilitatesprolifera— tionofhepaticstellatecellsthroughup—-regulationofplatelet—-de— rivedgrowthfactorreceptor.BiochemBiophysResCommun, 2004,323:1091—1095 5PotterJJ,Rennie-TankesleyL,MezeyE.Influenceofleptinin thedevelopmentofhepaticfibrosisproducedinmicebySchisto— somamansoniinfectionandbychroniccarbontetrachloridead— ministration.JHepatol,2003,38:281—288 6LeclercqIA,FieldJ,FarrellGC.Leptin-specificmechanisms forimpairedliverregenerationinob/obmiceaftertoxicinjury. 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Hepatology,2002,36:12—21 8SaxenaNK,SalibaG,FloydJJ,eta1.Leptininducesincreased alpha2(I)collagengeneexpressioninculturedrathepaticstel— latecells.JCellBiochem,2003,89:311-320 9IkejimaK,TakeiY,HondaH,eta1.Leptinreceptor-mediated signalingregulateshepaticfibrogenesisandremodelingofextra— cellularmatrixintherat.Gastr0enter0l0gy,2002,122: 1399—141O 10IkejimaK,LangT,ZhangYJ,eta1.Expressionofleptinre— ceptorsinhepaticsinusoidalcells.CompHepatol,2004, 14:s12 11Sakaida1,JinhuaS,UchidaK,eta1.Leptinrecept0rrdeficient Zucker(fa/fa)ratretardsthedevelopmentofpigserum-induced liverfibrosiswithKupffercelldysfunction.LifeSci,2003,73: 2491—2500 12IkejimaK,HondaH,YoshikawaM,eta1.Leptinaugments inflammatoryandprofibrogenicresponsesinthemurineliverin— ducedbyhepatotoxicchemicals.Hepatology,2001,34: 288—297 13KonK,IkejimaK,HiroseM,eta1.Pioglitazonepreventsear— ly—phasehepaticfibrogenesiscausedbycarbontetrachloride. BiochemBilphysResCommun,2002,291:55—61 (收稿日期:2005—09—24) (本文编辑:姜培乐)
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