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灵芝多糖对前列腺素E2抑制小鼠脾细胞增殖及IL1α, IL2 mRNA表达的拮抗作用 .doc

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灵芝多糖对前列腺素E2抑制小鼠脾细胞增殖及IL1α, IL2 mRNA表达的拮抗作用 .doc灵芝多糖对前列腺素E2抑制小鼠脾细胞增殖及IL1α, IL2 mRNA表达的拮抗作用 .doc 灵芝多糖对前列腺素E2抑制小鼠脾细胞增殖及IL 1α, IL 2 mRNA表达的拮抗作用 作者:张群 雷林生 余传林 吴曙光 【摘要】 【目的】观察灵芝多糖(GLB)对前列腺素E2(PGE2)抑制小鼠脾细胞增殖及IL 1α、IL 2 mRNA表达的拮抗作用。【方法】采用混合淋巴细胞培养反应作为实验模型,四甲基偶氮唑盐(MTT)法检测细胞增殖程度,半定量逆转录聚合酶链反应(RT PCR)法检测IL 1α及IL 2 mRNA的表达...
灵芝多糖对前列腺素E2抑制小鼠脾细胞增殖及IL1α, IL2 mRNA表达的拮抗作用  .doc
灵芝多糖对前列腺素E2抑制小鼠脾细胞增殖及IL1α, IL2 mRNA达的拮抗作用 .doc 灵芝多糖对前列腺素E2抑制小鼠脾细胞增殖及IL 1α, IL 2 mRNA表达的拮抗作用 作者:张群 雷林生 余传林 吴曙光 【摘要】 【目的】观察灵芝多糖(GLB)对前列腺素E2(PGE2)抑制小鼠脾细胞增殖及IL 1α、IL 2 mRNA表达的拮抗作用。【方法】采用混合淋巴细胞培养反应作为实验模型,四甲基偶氮唑盐(MTT)法检测细胞增殖程度,半定量逆转录聚合酶链反应(RT PCR)法检测IL 1α及IL 2 mRNA的表达水平。【 结果】PGE2连续作用48h后,脾细胞增殖反应受到不同程度的抑制作用,当PGE2浓度在10 μmol/L以上时差异有显著性意义(P,0.01);固定PGE2的浓度为20 μmol/L,并合用不同浓度的GLB(25、50、100、200mg/L),当GLB为100 mg/L以上浓度时可部分对抗PGE2(20 μmol/L)的抑制作用(P,0.05);培养8h及12h后,PGE2(20 μmol/L)可抑制IL 1α及IL 2 mRNA的表达,GLB为100 mg/L以上浓度时可部分对抗PGE2的抑制作用(P,0.05或P,0.01)。【结论】灵芝多糖可部分拮抗前列腺素E2对小鼠脾细胞增殖及IL 1α和IL 2 mRNA表达的抑制作用。 【关键词】 灵芝多糖/药理学; 肿瘤/中药疗法; 肿瘤/免疫学; 细胞培养 灵芝〔Ganoderma lucidum (Leyss ex Fr. Karst.)〕是灵芝菌科灵芝属真菌。文献报道〔1-3〕,灵芝多糖(GLB)是灵芝中主要的生物活性成分之一,其主要的药理作用为增强免疫功能和抗肿瘤。目前其抗肿瘤作用的机制尚不清楚。肿瘤逃避免疫监视的机制比较复杂,其中之一是有些肿瘤细胞能直接分泌〔4-5〕或刺激巨噬细胞〔6〕分泌前列腺素E2(PGE2),后者可对免疫系统产生广泛的抑制作用。藉此,肿瘤得以逃避免疫系统的攻击,在体内无限生长。本研究观察了灵芝多糖对PGE2抑制小鼠脾细胞增殖及IL 1α和IL 2 mRNA表达的影响,探讨灵芝多糖的抗肿瘤免疫学机理。现报道如下。 1 材料与方法 1.1 动物 C57BL/6j及BALB/c小鼠(SPF级),8,10周龄,雌雄兼用,购自南方医科大学实验动物中心,合格证号分别为:2005A044和2005A046。 1.2 药品与试剂 RPMI 1640培养基(GIBCO公司产品);新生牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司产品);HEPES(MDBio, Inc分装);四甲基偶氮唑盐(MTT)、焦碳酸二乙酯(DEPC)、前列腺素E2(PGE2)均为Sigma产品;RNAoutTM(深圳市华氏生物技术有限公司产品);傻瓜逆转录(RT)反应体系〔AccuPoa Scientific 公司);AB 120型电子天平(美国Denver Instrument公司);连续波长酶标仪(Bio RAD公司);CS 15R台式低温高速离心机(Bechman公司);PTC 100TMPCR循环仪 (美国MJ Research. Inc.公司);Po处的光密度(D570)值表示。 1.4.3 总RNA提取 根据试剂盒说明所提供的按比例缩小进行操作。于96孔板中,每孔加RNAoutTM试剂40μ,,每组收集10孔裂解液于0.5m,Eppendorf管中,提取总RNA。 1.4.4 逆转录反应 DEPC处理水配制的Oligo dT18 (10 nmol/L)与DEPC处理水配制的总,,, (0.1 mg/L)按体积比1?1混合于Eppendorf管中,70?孵育5min,,?冷却,min。吸取上述混合液20μL加入AccuPoin离心3s,置PCR循环仪中反应。反应参数如下:42?、60min,94?、5min。 1.4.5 PCR扩增 PCR引物采用在线软件Primer 3进行。小鼠IL 1α:上游引物 5’ GCATCCTCACAGCAGGATTT 3’,下游引物 5’ GAATCCAGGGGAAACACTGA 3’,PCR扩增产物为354bp。小鼠IL 2:上游引物5’ AAGCTCTACAGCGGAAGCAC 3’,下游引物5’ TCATCGAATTGGCACTCAAA 3’,PCR扩增产物为348bp。小鼠β actin:上游引物 5’ CCAGAGCAAGAGAGGTATCC 3’,下游引物 5’ GGGGTGTTGAAGGTCTCAAA 3’,PCR扩增产物为216bp。经预实验发现IL 1α和IL 2 mRNA的表达丰度约为β actin的1/5左右,为了使被检测基因的扩增速率与β actin的扩增速率基本一致,均处于指数扩增范围从而防止平台效应,在进行β actin基因扩增时,将逆转录第1链cDNA 产物稀释5倍,其他条件与被检测基因相同,操作如下:在PCR PreMix 管中加入消毒双蒸水8μL, 被检测基因mRNA逆转录产物2 μL或内参β actin mRNA逆转录产物经5倍稀释后2 μL,相应的上、下游引物各5μL(15pmol),振荡混匀,加石蜡油15μL,1000r/min 离心3s,置PCR循环仪中反应。反应参数如下: 94?预变性2.5min, 然后进入以下28个循环:94?变性45s,57?退火1min,72?延伸1.5min。循环完毕,72?延伸5min。 1.4.6 半定量分析 取被检测基因和β actin RT PCR扩增产物上样于20g/L琼脂糖凝胶(含溴化乙锭0.5g/L)梳孔中,采用0.5倍Tris 硼酸电泳缓冲液,在3V/cm电压条件下电泳50min。将凝胶转移至凝胶分析系统暗箱中,在紫外线照射下测定PCR扩增产物的荧光强度(I)值。结果表示为:p=〔I检测基因/(Iβ actin×5)〕×100%。 1.5 统计学方法 采用SPSS10.0统计软件进行统计分析。混合淋巴细胞培养反应数据的显著性差异采用独立样本t 检验;PCR半定量数据采用配对样本t 检验。 2 结果 2.1 PGE2对混合淋巴细胞培养反应(MLR)抑制作用的造模浓度 将C57BL/6j及BALB/c小鼠脾细胞按体积比1?1混合作为MLR模 型,PGE2连续作用48h后,小鼠脾细胞增殖受到不同程度的抑制作用,浓度在10 μmol/L以上时差异有显著性意义(P,0.01)。根据表1结果,选择PGE2抑制模型的造模浓度为20 μmol/L。2.2 GLB拮抗PGE2对MLR中脾细胞增殖的抑制作用 在MLR中,固定PGE2的浓度为20 μmol/L,再加入不同浓度的GLB(200、100、50、25 mg/L),观察GLB对PGE2的拮抗作用。培养48h后,当GLB为100 mg/L以上浓度时可部分对抗PGE2的抑制作用(P,0.05),但不能恢复至正常水平,结果见表2。 2.3 GLB对PGE2抑制MLR中脾细胞IL 1α mRNA表达的拮抗作用 培养8h后,GLB(200 mg/L)可明显促进IL 1α mRNA的表达,而PGE2(20 μmol/L)抑制IL 1α mRNA的表达。两者合用,GLB为100、200 mg/L的浓度时均可部分对抗PGE2对IL 1α mRNA表达的抑制作用,结果见图1、表3。 2.4 GLB对PGE2抑制MLR中脾细胞IL 2 mRNA表达的拮抗作用 培养12h后, GLB(200 mg/L)同样可以促进IL 2 mRNA的表达,而PGE2(20μmol/L)产生抑制作用,结果两者合用,GLB(100、200mg/L)也可部分对抗PGE2对IL 2 mRNA表达的抑制作用,结果见图2、表4。表1 PGE2对MLR中小鼠脾细胞增殖的抑制作用统计方法:t检验;?P,0.01,与阴性对照组比较 表2 GLB拮抗PGE2对MLR中脾细胞增殖的抑制作用统计方法:t检验;?P,0.01,与阴性对照组比较; ?P,0.05,与PGE2组比较表3 GLB对PGE2抑制MLR中脾细胞IL 1αmRNA表达的拮抗作用统计方法:t检验;?P,0.05,?P,0.01,与阴性对照组比较;?P,0.05,?P,0.01,与PGE2组比较表4 GLB对PGE2抑制MLR中脾细胞IL 2 mRNA表达的拮抗作用统计方法:t检验;?P,0.05,?P,0.01,与阴性对照组比较;?P,0.05,与PGE2组比较 3 讨论 肿瘤发生发展的机制十分复杂,其中有些肿瘤能释放出一些可溶性免疫抑制因子,降低宿主免疫力,从而逃避免疫系统的监视。PGE2是众多免疫抑制因子中最重要的一种,合成PGE2的限速酶是环氧化酶 2(COX 2), 许多良性癌前病变和恶性肿瘤中均有COX 2基因的扩增及其蛋白的高表达, 如结直肠腺瘤和腺癌、胃肠上皮化生和胃癌、食管癌、慢性肝炎和肝细胞肿瘤、胰腺癌、口腔黏膜白斑和头颈部肿瘤、腺瘤样不典型增生和非小细胞肺癌、乳腺癌、前列腺癌、膀胱癌、宫颈癌、光化性角化病和皮肤癌、胶质瘤等〔9-10〕。有些肿瘤除了本身合成和释放PGE2以外,还刺激宿主巨噬细胞产生PGE2〔6〕。可见,产生PGE2抑制宿主的免疫功能,从而逃避免疫系统的攻击是众多肿瘤得以无限生长的重要机理之一。PGE2对免疫系统的抑制作用广泛而深重,如抑制白介素1(IL 1)〔11〕和白介素2(IL 2)〔12〕的产生等。 在特异性免疫反应中,巨噬细胞在呈递抗原的同时,合成和释放IL 1,IL 1再作用于T辅助细胞产生IL 2,后者产生广泛的免疫调节作用,包括促进前体细胞毒T细胞的活化,并分化为具有杀伤活性的效应细胞毒T细胞(Tc),Tc在肿瘤免疫中发挥重要作用。 混合淋巴细胞培养反应(MLR)是同种异型抗原诱发的特异性免疫反应模型,具有特异性免疫应答的一般特征,实验操作简单、方便,得到的结果具有较好的指导意义。本研究结果显示PGE2可抑制MLR中小鼠脾细胞的增殖,抑制IL 1α和IL 2 mRNA的表达,这些结果与以往采用其他模型的研究结果相一致〔11-12〕,说明本研究的模型是可靠的。 灵芝多糖的免疫增强作用和抗肿瘤作用已得到广泛的研究和证实,但其抗肿瘤作用机制尚不十分清楚。本研究发现GLB在100 mg/L以上时可部分对抗PGE2(20 μmol/L)对小鼠脾细胞增殖和IL 1α、IL 2 mRNA表达的抑制作用(P,0.05),提示灵芝多糖对产生PGE2的肿瘤进行辅助治疗具有一定的临床意义,也提示灵芝多糖拮抗PGE2的免疫抑制作用可能是其抗肿瘤作用的免疫学机制之一。【
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