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右归饮含药血清对人骨髓基质干细胞诱导为成骨细胞的影响

2017-11-27 5页 doc 17KB 17阅读

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右归饮含药血清对人骨髓基质干细胞诱导为成骨细胞的影响右归饮含药血清对人骨髓基质干细胞诱导为成骨细胞的影响 右归饮含药血清对人骨髓基质干细胞诱导 为成骨细胞的影响 江西中医药2006年7月第7期总37卷第283期 1材料和方法 1.1主要仪器及试剂 二氧化碳培养箱,超净工作台,StatFax一2100型酶标仪, Olympus.倒置显微镜+Image—Pro-Plus图像分析系统; DMEM,胰蛋白酶,M,rT,I)MF4O,胎牛血清,碱性磷酸酶试剂 ,甘油磷酸钠,维生素C. 盒,地塞米松 1.2实验药物 右归饮制剂:熟地15g,枸杞子15g,山茱萸10淮山 药15杜仲...
右归饮含药血清对人骨髓基质干细胞诱导为成骨细胞的影响
右归饮含药血清对人骨髓基质干细胞诱导为成骨细胞的影响 右归饮含药血清对人骨髓基质干细胞诱导 为成骨细胞的影响 江西中医药2006年7月第7期总37卷第283期 1材料和方法 1.1主要仪器及试剂 二氧化碳培养箱,超净工作台,StatFax一2100型酶标仪, Olympus.倒置显微镜+Image—Pro-Plus图像分析系统; DMEM,胰蛋白酶,M,rT,I)MF4O,胎牛血清,碱性磷酸酶试剂 ,甘油磷酸钠,维生素C. 盒,地塞米松 1.2实验药物 右归饮制剂:熟地15g,枸杞子15g,山茱萸10淮山 药15杜仲15g,制附子10g,肉桂5炙甘草5g,加蒸馏 水500mL低温浸泡12小时,取出放置室温,煮沸后文火煎 30分钟,纱布过滤,药渣加水300mL,煮沸后再文火煎30分 钟,滤液合并,90?水浴浓缩至1:1(相当于生药1g/mL), 4?冰箱冷藏备用. 1.3实验方法 1.3.1右归饮含药血清的制备含药血清制备:以SD大鼠 10只,每日给右归饮9g/(kg?d)灌胃lj,另设5只对照组, 以牛理盐水灌胃,连续7天,于最后一次灌药后1小时(灌药 前禁食,不禁水12小时),麻醉后腹主动脉取血并分离血清 (取血5,l0mL,静0.5小时后,1000r/rain离心15分 钟),经56?,30分钟灭活,无菌过滤后,置一20?冰箱保存 备用. 1.3.2M,的分离和培养实验用骨髓取自12例健康成 人,取材前均说明并经本人同意志愿捐献,其中男9例, 基中,以1.0×106/an2密度接种于25cm2的培养瓶中,置于 37?,5%032培养箱中,3,5天后换液,去除未贴壁的细 胞,每3天换液1次,每天观察细胞形态,贴壁及生长情况. 待细胞融合达80%--90%,用0.25%胰蛋白酶消化,传代. 1.3.3体外成骨的诱导根据实验设计,当第3代的Ms 细胞贴壁生长达到70%,80%融合时,加入含地塞米松(5 nmol/L),磷酸甘油钠(10mmol/L)和维生素C(50~mol/ L)的DMEM成骨条件培养液,制成细胞悬液,按1×10/am2 的密度接种75cm的培养皿,置37?,5%(的培养箱培 养.右归饮组,加入右归饮含药血清培养液;对照组只加含 血清培养液.收集第15天细胞培养上清,用于AIP的检 测.每次每组设8孔,重复上述实验4次. 1.4成骨细胞的鉴定 1.4.1碱性磷酸酶(ALP)染色取诱导培养2周后的细 胞,PBS冲洗后,丙酮固定10分钟后,蒸馏水冲洗.人孵育 液中,37?孵育5小时,自来水冲洗后,用2%硝酸钴中浸透 5分钟,蒸馏水洗数次,再用1%的硫化铵(现配)中浸2,3 分钟,自来水冲洗,自然干燥后封固.对照组用未诱导的同 组细胞. 1.4.2钙结节染色(VonKossa法)细胞爬片用PBS冲2 次,经冷丙酮固定10分钟后,蒸馏水冲洗,放人2%硝酸银内 置暗处1小时,蒸馏水洗3次,5%硫代硫酸钠还原1小时 (硫代硫酸钠5g,0.1mol/L,氢氧化钠0.2mL,蒸馏水100 ? 57? JIANGXIJOURNALOFTRADITIONALCHINESEMEDICINE mE);干燥,封片. 1.5含药血清对成骨细胞作用的定量分析 1.5.1细胞内ALP含量检测取生长状态良好的第3代 细胞,按2×10/mL密度接种于2个24孔板内,分别采用普 通培养基培养,条件培养基诱导培养以及条件培养基诱导后 加入含右归饮血清培养,分别于第2,4,6,8天各取6孔细胞 用0.196TritonX一100裂解后,收集裂解液按ALP检测试剂 盒的说明进行加样操作,用分光光度计检测各管OD,然后按 公式计算出的含量:ALP(金氏单位/100mL)=测定管 吸光度/管吸光度X标准管含酚量×100ml/0.05ml 1.5.2MTT法将细胞以5×103/ml细胞数接种于96孔 板中,选择6孔细胞,每孔加入MTT溶液20止,37?孵育 4小时后终止培养,小心吸弃孔内培养上清液,每孔加入150 LDMSO,振荡15分钟裂解细胞,使沉淀物充分溶解.在酶 联免疫检测仪上测定每孔的OD490值. 1.6统计学处理 各数据均以均数?标准差(?s)示,用SPSS10.0进 行t检验分析. 2结果 2.1含药血清对成骨细胞增殖的影响 2.1.1细胞形态学观察(1)原代培养:细胞接种5,7天 后,可见贴壁的细胞中有大量圆形细胞,其中有少量呈成纤 维细胞样外形的贴壁细胞;(2)传代培养:传代培养细胞. 2.1.2^仉vI,法测定细胞增殖右归饮对成骨细胞增殖的 影响.由表1可知,右归饮组肼值与正常组比较有显着 性差异(P<0.05),表明右归饮对成骨细胞的增殖有促进作 用,与上述形态学观察结果一致. 表1右归饮含药血清对成骨细胞增殖及成骨省活力的影响 与正常相比,右归饮组P<0.05,?与正常相比,右归饮组P< 0.05. 2.2含药血清对成骨细胞生物活性的影响 2.2.1钙结节染色条件培养基培养组细胞呈集落生长后 开始形成钙结节,细胞间出现的致密的圆形不透光团块呈现 片状的棕染,着色区域范围广,面积大.条件培养基诱导加 含右归饮血清培养组细胞,上述表现更为明显.普通培养基 组细胞未见典型钙结节形成. 2.2.2细胞内ALP含量测定右归饮对成骨细胞内ALP 含量影响由表1可知,右归饮组细胞内值与正常组比 较有显着性差异(P<0.05),表明右归饮对成骨细胞的活性 有促进作用,与上述形态学观察结果一致. 3讨论 3.1骨髓基质干细胞成骨 正常骨髓组织分为造血系统和基质细胞系统,基质细胞 系统是指骨髓腔内为造血系统提供结构和功能支持的结缔 组织,造血细胞可以释放某些因子,刺激基质细胞生长…1. 基质细胞具有多方向分化的潜能,在不同条件下分化为成骨 细胞,肌细胞,脂肪细胞等多种细胞系统2.Long等推测骨 髓基质干细胞分化为成骨细胞的顺序为:克隆形成细胞—— 簇状形成细胞——成骨前细胞——成骨细胞L2J. ALP是鉴定成骨细胞的生化和组织学标志,并可用来评 价骨发生.我们观察到,体外培养的细胞集落中央最早出现 阳性表达,染色也较深.此处细胞密集,细胞分裂受到接触 抑制,细胞最早开始向成骨细胞分化,然后周边细胞ALP染 色出现阳性,进入细胞分化阶段J. 钙钴法是利用碱性磷酸酶在pH9.4的环境下,以镁离子 为激活剂,能使甘油磷酸钠水解出磷酸,再与高浓度钙盐 结合形成无色磷酸钙.磷酸钙与硝酸钴结合形成磷酸钴,经 过硫化胺处理后形成棕黑色沉淀于酶活性处,并随酶活性增 加而颜色加深.改良的Gomori钙钴法可较好的显示碱性磷 酸酶在细胞中的存在.碱性磷酸酶是成骨细胞的一种细胞 表面标志性酶.随着成骨分化程度的增加,碱性磷酸酶表达 增强引. 3.2右归饮对成骨细胞的影响 根据中医"肾主骨"理论,右归饮是温补肾阳的经典名 方,本研究通过右归饮对体外培养的成骨细胞的作用,观察 到右归饮对成骨的作用,为临床治疗提供了新思路. 在本实验中,通过确定碱性磷酸酶的活性来判定右归饮 的成骨作用,笔者认为右归饮可以通过增加碱性磷酸酶的活 性促进钙沉积,从而引起成骨,这与激素降低碱性磷酸酶的 活性,刺激破骨细胞活动,引起钙流失的作用相抵消.同时 右归饮含药血清可以促进成骨细胞增殖,从而进一步引起成 骨作用. 参考文献 [1]陈奇.中药药理研究方法学[M].北京:人民卫生出版社, 1993.33,34 [2]LongMW,RobisonJA,AshcraftEA,ata1.Regulationofhuman bonemarrow-derivedosteoprogenitorcellsbyosteogenicgrowthfac— tor[J].JOinInvestigation,1995,95:881--887 [3]王敏,翁雨来,胡晓洁,等.犬骨髓基质干细胞诱导为成骨细胞的 实验研究[J].上海口腔医学,2002,l1(4):327,331 [4]康新勤,臧伟进,胥晓丽,等.大鼠骨髓问充质干细胞定向成骨细 胞分化中碱性磷酸酶的变化[J].西安交通大学(医学版), 2004,25(4):366,368 (收稿日期:2006—09—06) ? 58?
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