· ·国际生殖健康/计划生育杂志 2008年 9月第 27卷第 5期 JIntReprodHealth5FamPlan,Sep.2008,Vol.27,No.5
综 述
生殖健康和疾病
收稿日期:2007-09-05 修回日期:2008-07-19
子宫内膜同源盒基因A10表达及调控研究
复旦大学附属妇产科医院(200011) 陈瑞芳综述 黄紫蓉 丰有吉审校
摘 要 子宫内膜同源盒基因 A10(HOXA10)是内膜细胞发育和分化的调控基因,在子宫内膜的表达呈月经周
期依赖性,并持续表达于妊娠子宫的蜕膜组织。HOXA10基因的表达与子宫内膜的容受性,胚胎的黏附与着床,母胎
界面的免疫耐受、胚胎的生长发育等紧密相关。对HOXA10基因的深入研究将为其在人工流产、不孕不育、辅助生殖
技术等方面的临床应用提供可能性。
关键词 同源盒基因 A10/HOXA10 子宫内膜容受性 雌激素 孕激素
1984年 McGinnis等首先在果蝇体内发现一类
与其体节突变相关的基因,该类基因在果蝇的体内
具有特异的表达节段和时相,将其命名为同源盒
(homeobox,HOX)基因。后续研究发现,HOX基因广
泛存在于酵母至人类的几乎所有真核细胞中,并且
种属间具有高度的基因序列的保守性和基因功能的
相似性[1]。在所有的HOX基因中均含有一段高度保
守的碱基序列,由 183个核苷酸组成,所编码的
HOX蛋白是一类转录调节因子,都含有一种61个
氨基酸组成的同源功能区域,形成螺旋-转角-螺旋
的结构,并通过该结构与DNA中特异的核苷酸序列
结合。HOX基因根据其在染色体上的排列方式可分
为串群性和非串群性。串群性 HOX基因成簇排列
在染色体上并按前后轴(A-P)的方式表达,称为I类
HOX基因 (A-P型),遵循时空共线性规则进行表
达,即基因的这种线形排列顺序与其沿着胚胎前后
轴的表达时相和特定的区域相对应。HOX的时空共
线性有表遗传(epigenecode)调控,组蛋白甲基化酶
TrxG和PcG通过组蛋白的甲基化,控制HOX1~13
位点基因在不同的时间点和空间位置依次激活与静
默(express/silence)。另一类HOX基因为非串群性,
散在于不同的染色体上,称为非 I类 HOX基因(非
A-P型),如CDX,PAX,EMX和MSX等。HOX基因
是一类控制胚胎生长、发育和成体细胞增殖、分化的
调节基因,其在生物进化中具有高度的保守性,是生
物发育和分化的主控基因[2]。HOXA10基因属于B
型腹型 HOX(AbdHOX)基因亚家族,在人类主要表
达于子宫内膜,对子宫内膜细胞的增殖和分化、子宫
内膜容受性、胚胎的着床和发育、母胎免疫界面的稳
定等都起着重要作用。本文综述HOXA10基因在女
性生殖系统,主要是在子宫内膜中表达及调控研究。
HOXA10基因分子结构及在女性生殖系统表达
HOXA10基因编码一种含 406个氨基酸的蛋
白质,其中包含一高度保守的由60个氨基酸组成的
同源结构多肽域,相对分子质量约为 50×103
[Lowney,1991]。 由 于 剪 接 方 式 基 因 的 不 同 ,
HOXA10产生3种不同的转录产物,即HOXA10-1,
-2和-3。HOXA10-3因其HOX序列上游含有多个终
止密码子且缺乏框内 ATG而不能编码含有同源结
构域的基因产物。所以,实际上只有 HOXA10-1和
HOXA10-2能够编码HOX相关蛋白,两者拥有一个
同样的同源结构域(61个氨基酸)和 1个共同的 3’
端编码的C区(14个氨基酸),但有1个不同长度的
5’外显子编码的氨基区(N区),故具有不同的生理
功能。作为转录因子,单个HOXA10作用的顺式元
件为 5’-AA (A/T)TTTTATAC-3’,核心序列为
TTAT。HOXA10与其辅因子PBX2及Meis1相互作
用形成不同的异源二聚体或三聚体,调节同源域氨
基端与HOX基因核心序列的相互作用,使同源域
结构能够识别HOX基因核心序列中单个核苷酸的
变化,从而使其作用的靶基因具有特异性[3]。
原位杂交结果显示,小鼠胚胎副中肾管中均有
HOX9-13基因表达且水平相当,但生后 2周龄的雌
性小鼠生殖道即有 HOX基因轴区域表达。对于人
类,HOXA基因轴在生殖系统表达区域和小鼠非常
一致,HOXA9表达于输卵管,HOXA10表达于子
宫,HOXA11表达于子宫下段和宫颈,HOXA13表
达于阴道上段。在成体,HOXA10在子宫内膜的腺
上皮和基质细胞中均有表达,分泌中晚期总体表达
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显著升高;且基质细胞表达高于腺上皮细胞[李红,
2002]。但两者的表达规律有所不同,在子宫内膜增
殖期和分泌早期,HOXA10在腺上皮和基质细胞均
有较高水平的表达;在对应于着床期的分泌中期,
HOXA10在腺上皮的表达明显减弱甚至消失,而在
基质细胞仍维持较高的水平表达,这种现象持续到
分泌晚期。此外,在人的子宫肌层中,HOXA10在对
应于子宫内膜分泌中期时表达下降,Cermik等
(2001)认为,这阻止了子宫肌层细胞的最终分化,使
肌细胞保留了增殖的能力以适应妊娠过程中胚胎的
不断生长。至足月妊娠时,子宫肌层中的HOX-A10
的表达又上升,使肌细胞具有足够的收缩力,有助于
分娩的顺利进行。而HOXA10的异常表达将引起相
应疾病,如阴道腺病、卵巢内膜样癌及异位妊娠、早
产等[4]。
HOXA10在女性生殖系统中的作用及其机制
HOXA10作为一种多效性的转录因子参与胚
胎着床及发育的多个环节。如:子宫内膜的增殖与分
化、胞饮突和微绒毛的形成、胚胎的定位及黏附、子
宫内膜基质细胞的蜕膜化、胚胎的生长及发育、母胎
界面的免疫应答等[5]。
一、对甾体激素功能的影响
FK506结合蛋白 4(FKBP52)是子宫内膜 HOX
A10直接调节的信号分子,又反过来影响甾体激素
功能。HOXA10-FKBP52信号轴对子宫内膜容受性
的形成和胚胎着床起着重要作用[6]。HOXA10基因
缺失的小鼠FKBP52下调,在着床窗口期对孕激素
的反应性降低,子宫基质细胞增殖障碍,伴随着周期
依赖性蛋白激酶抑制基因 p57和 p15的表达增加,
导致T细胞多克隆增殖,取代了正常母胎界面着床
前由孕激素调节的免疫抑制作用,对胚胎着床产生
不利的影响[7]。目前普遍认为,人类的分娩启动不是
体内孕激素的显著撤退,而是孕激素抵抗环境的形
成。HOXA10(-/-)的小鼠表现出明显的孕激素抵抗,
引起受孕激素调控的前列腺素E(PGE)的受体EP3和
EP4的异常表达,子宫出现异常收缩引起早产[Lim,
1999]。Sarno等[8]通过向蜕膜组织添加白细胞介素
1β(IL-1β)和凝血酶在体外模拟早产的内环境,也出
现类似情况,HOXA10的表达明显下降,PGHOX
A10轴被激活,孕激素抵抗环境形成从而引起早产。
二、对整联蛋白β3表达的调节
整联蛋白亚单位 β3仅在分泌中期及以后表达
于子宫内膜上皮细胞,是着床窗口期的重要标志。整
联蛋白介导细胞和细胞外基质的黏附,参与早期胚
胎与子宫内膜的黏附反应,使孕卵着床并调节以后
胚胎的生长发育。当向小鼠体内添加整联蛋白 β3
单克隆抗体时,其着床率明显下降[Illera,2000]。子
宫内膜异位症(EMs)是常见的妇科疾病,可导致不
孕。Kimm等发现,患EMs的狒狒子宫内膜上 HOX
A10的表达下降,引起整联蛋白 β3的明显下降,同
时还伴随胰岛素样生长因子结合蛋白 1(IGFBP1)
mRNA表达的的显著下降,由此推测,HOXA10表
达降低引起的整联蛋白 β3和胰岛素样生长因子
(IGF)表达的下调可能是EMs引起不孕的原因之一[9]。
通过进一步对整联β蛋白3转录起始位点5’区域
分析,发现该区域存在7个一致性AbdB型HOX结
合位点,其中一个41bp的基因片段对HOXA10有
很高的亲和力,这个元件包含两个HOXA10结合位
点,HOXA10与该调节元件结合后直接上调整联蛋
白β3,并可影响性激素对整联蛋白β3表达的调控
作用[Daftary,2002]。
三、对IGFBP1表达的影响
IGFBP1是能调节IGF-Ⅰ和-Ⅱ的生物利用度的
可溶性蛋白家族成员,是受HOXA10调节的下游基
因。IGFBP1与IGF共同作用,参与细胞凋亡、新陈代
谢及生长发育等多种生理过程。在子宫内膜的基质
细胞中,HOXA10与其他转录因子共同作用,上调
IGFBP-1表达,蜕膜化的子宫内膜基质细胞表达
IGFBP-1,在母胎界面可能通过旁分泌形式与胚胎的
滋养细胞分泌的 IGF-Ⅱ相互作用,有助于胚胎成功
着床[Kimm,2003]。同时,IGFBP-1还能调节滋养细胞
在适度范围内的侵蚀能力,既能使胚胎顺利着床,又
不至于侵蚀过度产生滋养细胞疾病[Foucher,2002]。
四、对EMX2表达的影响
EMX2是人类与果蝇的同源结构域基因,含同
源转录因子,在头颅的早期发育过程中发挥重要作
用,同时在泌尿生殖系统的上皮也有表达。EMX2是
女性生殖系统正常发育必需的,其异常表达将引起
胚胎副中肾的发育不全甚至可因肾脏发育异常而导
致胎死宫内[Miyamoto,1997]。在人类和小鼠,在整
个月经周期或动情周期的子宫内膜EMX2/Emx2主
要表达于腺上皮,间质表达低,HOXA10通过与
EMX25’区域的150bp元件结合发挥了对EMX2的
抑制作用。在体内,EMX2的异常过高表达将引起着
床前 HOXA10所调节的其他靶基因的整体表达水
平的改变,导致低着床率[10]。有研究证实,在围着床
期转染了EMX2-cDNA的小鼠,其产仔量将显著下
降40%。
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五、对PG信号系统的调节
PG系统具有血管活性和促有丝分裂活性,在胚
胎着床和子宫蜕膜化过程中有重要作用 [11]。
HOXA10(-/-)的小鼠,不但子宫内膜基质细胞分化
过程存在缺陷,且孕激素对基质细胞的促分化反应
也消失[Lim,1999]。HOXA10通过特异性介导孕激
素对 PGE受体 EP3和 EP4的调节及影响 PG合成
的关键酶环氧合酶 2(COX-2)的表达,改变子宫内
膜基质PG信号系统的传递。
六、对基质细胞增生、分化的影响
周期素蛋白(cyclin)D3是一种G1期蛋白,在蜕
膜化开始即表达于基质细胞,能激活细胞周期,促进
细胞增殖与分化。p57和p15是周期素蛋白依赖激
酶抑制基因,是 HOXA10的下游分子,表达于蜕膜
化过程中的子宫内膜基质细胞(ESC)。HOXA10(-/-)
子宫,即使给予蜕膜化刺激,p57,p15及周期素蛋
白D3的表达也不能上调,同时出现基质细胞增生
障碍[12]。Yoshida等[13]研究发现,在子宫内膜癌中
HOXA10的表达程度与癌细胞的分化等级密切相
关,且影响肿瘤细胞的浸润及扩散能力。
七、对子宫内膜超微结构的影响
胞饮突和微绒毛结构是子宫内膜容受性的形态
学标志,子宫内膜表面的胞饮突和微绒毛结构的数
目和成熟程度都随 HOXA10表达程度的不同而消
长,由此推测HOXA10可能通过影响子宫内膜的形
态学变化而影响妊娠卵着床[Bagot,2001]。
HOXA10表达的调节因素
HOXA10的表达受到多种因素的调节,最主要
的是类固醇激素,尤其是雌孕激素的调节。此外,还
存在其他调节因素,如自身调节,多种细胞因子的调
节等。
一、类固醇激素
1.雌激素 研究发现,在胚胎的发育过程中,若
阻碍了雌二醇(E2)/雌激素受体(ER)/雌激素反应
元件(ERE)复合物的形成,则将使HOXA10的表达
下降,引起子宫发育异常[14]。胚胎时期暴露于己烯雌
酚(DES)的小鼠,HOXA10与 A11的表达将后移,
即正常表达于子宫内膜和宫颈的腺体将在阴道表
达,从而引起阴道腺病[Block,2000]。DES不仅可以
引起HOX基因的表达量异常,而且引起 HOX基因
的表达位置异常,这可能是其致畸的原因之一[15]。在
生理浓度(10-6~10-10M)内,雌激素对子宫内膜上皮
细胞和基质细胞的HOXA10表达均有上调作用,且
呈现剂量依赖性,但是超过此浓度,将 HOXA10的
表达将不再增加。雌激素可以通过ER与HOXA10
的ERE-1及ERE-2结合,使HOXA10转录激活,增
加 HOXA10的表达。放线菌素能阻止新的蛋白合
成,但是用放线菌素预处理的的内膜细胞,雌激素对
HOXA10的升调作用并不受影响,表明雌激素可直
接调节HOXA10的表达,中间不需要新的蛋白合成
[Ma,1998]。在ER(+)的乳腺癌中,雌激素上调HOX
A10的表达,,而HOXA10反过来又促进抑癌基因
p53的表达,从而降低了肿瘤细胞的侵蚀能力。他莫
昔芬等选择性雌激素调节剂就是基于此原理用于治
疗乳腺癌[16]。
2.孕激素 在孕激素的作用下,HOXA10的表
达呈剂量依赖性增加,且较雌激素作用下上升幅度
更大。孕激素浓度从10-9M增加到10-6M时,HOX
A10表达增加25倍。孕激素对HOXA10的上调作
用是通过其受体(PR)实现的,该过程无需新蛋白的
合成,可被孕激素拮抗剂米非司酮阻断[Yaoting,
1999]。在基质细胞,E2和P上调HOXA10有叠加效
应,但在上皮细胞,两者的刺激程度不叠加[Gui,
1999]。在分泌期的子宫内膜,孕激素能上调HOX
A10的表达。但是长期服用以孕激素为主的避孕药
时可以看到 HOXA10表达下降,子宫内膜厚度变
薄,内膜细胞分化不良,不能形成有利于胚胎着床的
内环境,从而达到避孕的目的[Taylor,1998]。在体
内,孕激素升高对应子宫内膜分泌中期,内膜腺上皮
HOXA10表达却降低或消失,即孕激素对腺上皮
HOXA10的表达起负调控作用,其具体作用机制有
待进一步研究。HOXA11在月经周期中的表达规律
及功能与 HOXA10具有极高相似性。体外研究发
现,在上皮细胞和间质细胞分离培养时,孕激素对腺
上皮细胞中 HOXA11的表达起升调作用。由此推
测,间质细胞可能参与了孕激素对内膜腺上皮HOX
A11表达的负调控,其可能机制是孕激素作用于间
质细胞,分泌某种或某些因子,参与孕激素对内膜腺
上皮HOXA11的降调。HOXA10的表达机制是否
具有相似性有待进一步证实。
3.其他 雄激素下调HOXA10的表达,是雌激
素拮抗剂,可以拮抗孕激素和雌激素与相应的受体结
合,还可以通过雄激素受体直接影响内膜容受性[17]。
松弛素是一种由黄体产生的多肽类激素,单独作用
时对基质细胞无太大影响,但可显著增加E2和孕激
素对HOXA10表达的上调作用[Gui,1999]。
二、自身调节
Kelly等[18]发现,在 Ishikawa细胞中,有一种分
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子质量为370ku的元件,其受HOXA10调节,并能
促进HOXA10表达。进一步研究发现,该元件包含
一个HOXA10蛋白结合位点,位于HOXA10基因
5’端的调节区域。正是通过HOXA10的自身调节途
径,HOXA10基因的表达才可以在激素受体缺乏的
条件下得以持续。
三、维生素D
1,25-(OH)2D3是维生素D的活性形式,证实在
女性的生殖过程中起作用。在人子宫内膜基质细胞
中,1,25-(OH)2D3可以通过结合维生素 D受体
(VDR) 与 HOXA10调 节 区 其 受 体 反 应 元 件
(VDRE)相互作用上调 HOXA10表达,其中一个可
能的VDRE为HOXA10上游的385~434bp基因片
段[19]。胚胎时期维生素D缺乏小鼠不仅可能出现软
骨病,而且子宫发育不全,甚至有可能胎死宫内
[Yoshizawa,1997]。在成体小鼠体内维生素D不足
将导致孕小鼠子宫内膜蜕膜化失败,致胚胎不能着
床。反之,若通过向体内添加1,25-(OH)2D3激活维
生素D信号传导途径,将引起子宫重量的增加和基
质细胞的蜕膜化[Halhali,1991]。
四、其他
着床期,HOXA10表达局限于基质,而着床前
腺上皮中白血病抑制因子(LIF)的升调是着床的必
需诱导信号,LIF表达的异常可导致上皮和基质间
的信号中断,从而影响着床。肝素结合表皮生长因子
样生长因子(HB-ECG)的局限性表达是着床的最早
标志,约在受精后 3.5d发生,在分泌中期,HB-EGF
能刺激HOXA10的表达[Lessey,2002]。Somkuti等
(1999)认为,HOXA10在着床期的强表达受到 HB
-ECG和EGF等的调节。Martin等[20]发现,HOXA10
的表达具有细胞类型特异性,还受到特异蛋白1(Sp1)
的调节,在子宫内膜Sp1呈月经周期阶段特异性表
达,首先表达于血管周的细胞。而Bagot(2000)则认
为子宫内膜的发育是基质和上皮细胞的相互作用和
调节的结果,着床期上皮细胞的发育可能是通过基
质的 ER的旁分泌机制调节的,HOXA10可能是基
质旁分泌调节的一个靶基因。
与展望
在胚胎发育过程中,HOXA10特定的时间及空
间的顺序表达是胚胎体轴尤其是子宫的正常发育必
需的。在成熟个体内,HOXA10基因又使某些组织
器官保留了分化增殖的能力,使其与之结构功能相
适应。如HOXA10的在成体子宫内膜表达,使其具
有周期性增殖、分化的功能,在着床窗口期能形成适
于胚胎着床的内环境,使胚胎成功着床并使其生长
发育。HOXA10的异常表达在胚胎时期将引起胎儿
畸形,在成体将引起子宫内膜功能异常着床失败、早
期流产、早产等的发生。性激素是HOXA10的主要
调节因素,随着对性激素-HOXA10轴进一步研究,
必将发现更多受其直接或间接调控的基因,将为新
的靶基因治疗技术提供可能。如通过在着床期调控
性激素浓度特异性升调或降调靶基因 HOXA10表
达,改变胚胎着床率,达到生育或避孕的目的。也将
使HOXA10在计划生育、辅助生殖技术等方面具有
广泛的应用前景。
参 考 文 献
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自然杀伤细胞活化性受体与妊娠
山东泰山医学院免疫学教研室(271000) 杨 华 胡景霞综述 宋文刚审校
摘 要 蜕膜自然杀伤(dNK)细胞是构成妊娠早期子宫蜕膜最主要的淋巴细胞,表型 CD56superbrightCD16-CD9+,功
能明显区别于外周血NK细胞,通过分泌产生各种细胞因子和生长因子,在局部发挥着重要的免疫调节功能,以维持
胎盘正常生成,进而保证母体和胎儿的健康。综述了利用人类标本观察到的子宫 NK细胞所特有的功能,重点论述了
NK细胞活化性受体与蜕膜基质细胞、滋养层细胞上的配体相互作用,介导dNK处于活化状态,而这种活化并不表现
为细胞毒活性,而是通过分泌调节因子和各种生长因子,在维持健康妊娠中发挥积极作用。
关键词 自然杀伤细胞 蜕膜 妊娠
基金项目:山东省科技攻关项目(编号:2006GG2202015)
基金项目:山东省计生委科技发展计划项目(编号:2006-9)
通讯作者:宋文刚,E-mail:wgsong@tsmc.edu.cn
收稿日期:2007-09-04 修回日期:2008-08-02
妊娠是一个复杂的生理过程。从免疫学角度看,
带有父方抗原的胎儿及其附属物类似半同种异体移
植物,将引致母体免疫系统对其进行免疫识别及应
答;然而从妊娠结局看,又与移植排斥不同,母体没
有排斥同种异基因移植物的胚胎,而是保护其正常
发育,直至分娩。最近几年,生殖免疫学者开始对自
然杀伤(NK)细胞在其中的作用给与更多关注。事实
上,与排卵前期非妊娠子宫NK细胞缺如相比,妊娠
子宫内这群细胞的数量多得惊人[1],并且其数量在
妊娠的头三个月中达到最高峰,而在妊娠终末期检
测不到。通过对妊娠早期人类子宫内膜植入位点周
围细胞的研究发现,NK(CD56superbrightCD16-)细胞在其
中占有绝对多数,其数量大约占蜕膜淋巴细胞总数
的70%和蜕膜细胞总数的30%[2],该群细胞又被称
为蜕膜NK(decidualnaturalkillercells,dNK)细胞。
dNK细胞功能障碍与病理妊娠如反复性自然流产、
胎儿生长受限以及子痫前期密切相关。母体对胚胎
有着精细的免疫应答和免疫调控机制。本文就NK细
胞活化性受体在维持健康妊娠中的作用进行综述。
研究
,dNK细胞对于维持健康妊娠发挥着
极为重要的作用。如:NK细胞缺失鼠(Tgε26,RAG-
2-/-γc-/-)能够受孕,但是往往缺乏子宫内膜腺体,其
胎盘体积小于正常受孕鼠且常伴有蜕膜水肿,并且供
应胎盘组织的母体子宫螺旋动脉不能相应地增粗,
子宫中膜淋巴细胞汇集区(themesometriallymphoid
aggregateofpregnancy,MLAP)不能正常形成[3]。进一
步研究发现,Tgε26鼠子宫组织中的γ干扰素(IFN-γ)
浓度低于正常水平1/10,RAG-2-/-γc-/-(dNK-NK-T-B-)
子宫组织内的IFN-γ浓度极低[4]。NK细胞缺失小鼠
注射鼠IFN-γ后,其基因缺陷所致后果就可以得到
逆转,蜕膜动脉也将发生正常的重塑。Croy等[5]通过
对NK细胞缺陷鼠的研究发现,小鼠dNK细胞通过
分泌IFN-γ调控子宫血管重塑是维持健康妊娠的必
要条件。同时Hu等[6]通过体外实验证明,IFN-γ部
分参与了dNK对于滋养层细胞生长的调控。然而由
于胎盘解剖结构的高度种属差异,使得用小鼠研究
dNK细胞功能一直充满争议。人类滋养层细胞通过
广泛地侵蚀入子宫蜕膜基质及动脉使胎儿获得营
养,相反小鼠具有上皮样绒毛膜胎盘化生,子宫壁没
有被广泛侵蚀,而是通过血管新生化(angiogenesis)
增加对胎儿的血液供应。人类dNK细胞在妊娠过程
中的作用引起更加广泛关注。
dNK细胞与外周血NK细胞表型与功能的不同
dNK细胞在基因表达、表型与功能方面都明显
区别于外周血NK细胞[7]。正常人外周血中NK细胞
占淋巴细胞的 10%~15%,其中 90%是具有高细胞
毒活性的CD56dimCD16+NK细胞亚群,10%是低细胞
毒活性高细胞因子分泌能力的 CD56brightCD16-/dimNK
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