大鼠尾静脉注射法_陈育尧

大鼠尾静脉注射法 陈育尧，黄雪玲（南方医科大学中医药学院，广东 广州 510515） 关键词：大鼠尾静脉；注射法；动物实验技术 中图分类号：R-332 文献标识码：B 文章编号：1673-4254(2009)06-1312-01 大鼠尾静脉注射是药理、毒理实验中常用的注射 方法，有些实验要求注射时快速、准确。我们在长期的 动物实验技能操作中，总结出一种新的大鼠尾静脉注 射方法，具体方法介绍如下。 1 器材 2 ml 或 2.5 ml 一次性注射器， 酒精棉球， 干棉 球，棉纱手套。 2 方法 2.1 固定 大鼠尾部血管与小鼠情况类似，在背、腹侧及左 右两侧均有集中分布，每侧均由数对伴行的动、静脉 组成的血管丛。 在这些血管中有四根十分明显：背腹 各有一根动脉，两侧各有一根静脉。 两侧尾静脉比较 容易固定。助手用左手（戴棉纱手套）按住动物背部及 颈部，也可以先让动物钻进棉纱手套里，因为棉纱手 套比较透气，不会影响动物呼吸，并可限制动物活动， 徒手按住动物背部。 先用 70%~75%酒精棉球涂擦大 鼠尾巴，再用干棉球擦干，目的是尽量使大鼠尾巴保 持干净。右手大拇指及食指挤压大鼠尾巴根部静脉并 往尾巴尖部推， 同时将尾部向左旋或向右旋约 90°， 使一侧尾静脉充盈并朝上。 操作者左手朝上，食指及 中指置大鼠尾巴之下，拇指置大鼠尾巴之上，夹住大 鼠尾巴尾部，用拇指和食指控制大鼠尾巴角度，使其 尾巴尖部朝下。 左手食指及中指靠在实验台边缘，使 大鼠尾巴与实验台保持平行。 2.2 进针［1］ 操作者右手持 2.5 ml 注射器（5 号针头），使针头 与静脉平行（小于 15°），从尾下五分之一处（约距尾 尖 3~5 cm）处进针，此处皮肤较薄，血管比较明显。 于 大鼠尾巴拐弯处（朝下处）平行刺入已经充盈的尾静 脉内约 5 mm。 注射器外套置于拇指及中指交叉处， 并调整好位置，保持针头刺入点、血管、注射器成一条 直线。 稍回抽见有回血，说明针头已经准确插入静脉 内。 2.3 注射 操作者松开注射器， 食指及中指夹住注射器外 套，拇指推注射器按手，并将药液按一定速度推入，同 时助手松开挤压的血管。 刺入后先缓注少量药液，如 无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。若注射时 有较大阻力，说明针头未刺入血管，应重新向尾根部 移动注射。 这种注射方法准确率高速度快， 一次注射量为 1~5 μl/g体质量。一般 1 h可以完成注射约 40~60只， 熟练者可以更多。 注射完毕后用棉球按压止血。 3 体会 传统的大鼠尾静脉注射法是将大鼠置于大鼠固 定器内，使鼠尾在外。 先将鼠尾在 50℃热水中浸泡， 再用 70%~75%酒精棉球涂擦尾部，使血管扩张。左手 拉尾尖，右手持针，从鼠尾左右两侧尾静脉中，选择一 条扩张最明显的尾静脉，将针尖刺入血管，推入药液。 由于用上述方法进行大鼠尾静脉注射时， 操作繁琐， 耗时较长，动物固定不充分，而且血管不够充盈而导 致进针不畅或者进针后由于动物挣扎，针头很容易刺 穿血管，推注时通常阻力较大，且尾部肿胀变白而注 射失败，准确率也较低。我们介绍该方法，以便用于药 理学、毒理学等相关的大鼠尾静脉注射实验。 参考文献： ［1］ 陈育尧,黄雪玲.小鼠尾静脉注射法［J］. 毒理学杂志, 2008, 22(4): 331-2. 收稿日期：2009-01-02 作者简介 ：陈育尧 （1962-），男 ，本科 ，高级实验师 ，E-mail: chyy@ fimmu.com 南方医科大学学报(J South Med Univ) 2009;29(6)1312· ·