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高效液相色谱法测定大蒜中蒜氨酸含量

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高效液相色谱法测定大蒜中蒜氨酸含量高效液相色谱法测定大蒜中蒜氨酸含量 高效液相色谱法测定大蒜中蒜氨酸含量 高效液相色谱法测定大蒜中蒜氨酸含量 王伟乔旭光李福伟 1(山东农业大学食品科学与工程学院,泰安,271018)2(山东省科学院分析测试中心,济南,250014) 摘要采用高效液相色谱法对大蒜中的蒜氨酸进行定性定量研究,利用微波灭酶,水煮灭酶,有机溶剂冷冻灭 蒜氨酸的出峰时间为3.717min,测得蒜氨酸酶3种方法对大蒜中蒜氨酸进行提取. 的含量为:0.823%, 0.730%和0.156%.同时对大蒜破碎放置1d后体系中剩余蒜氨酸的含量进行了分...
高效液相色谱法测定大蒜中蒜氨酸含量
高效液相色谱法测定大蒜中蒜氨酸含量 高效液相色谱法测定大蒜中蒜氨酸含量 高效液相色谱法测定大蒜中蒜氨酸含量 王伟乔旭光李福伟 1(山东农业大学食品科学与工程学院,泰安,271018)2(山东省科学院分析测试中心,济南,250014) 摘要采用高效液相色谱法对大蒜中的蒜氨酸进行定性定量研究,利用微波灭酶,水煮灭酶,有机溶剂冷冻灭 蒜氨酸的出峰时间为3.717min,测得蒜氨酸酶3种方法对大蒜中蒜氨酸进行提取. 的含量为:0.823%, 0.730%和0.156%.同时对大蒜破碎放置1d后体系中剩余蒜氨酸的含量进行了分析,测得剩余蒜氨酸含量占 蒜氨酸总量的23.0%.通过向破碎的大蒜体系中添加磷酸吡哆醛(PLP),能够显着提高蒜氨酸的转化率. 关键词大蒜,蒜氨酸,高效液相色谱,含量 大蒜(AlliumsativumL)为百合科葱属植物蒜 的鳞茎,含有丰富的营养物质且具有抗肿瘤,保护心 血管系统,降低血糖等功效_lJ.大蒜之所以具有广 泛的药理作用,原因在于大蒜含有的生物活性物质 —— 含硫化合物.蒜氨酸(S一烯丙基一L一半胱氨 酸,Alliin)是大蒜中的一种主要含硫氨基酸.大蒜 破碎后,存在于大蒜细胞质中的风味前体物蒜氨酸被 存在于液泡中的蒜氨酸酶(Alliinase)催化,在磷酸吡 哆醛(PLP)的协同作用下,分解为大蒜素(Allicin)和 丙酮酸I2J.蒜氨酸的传统测定方法有定硫法,硝酸 汞测定法,苯腙法[,茚三酮反应法_4J,这些测定方 法存在专一性差,结果准确度不高等问题,最新的美 国药典I5采用衍生化法测定大蒜中的蒜氨酸,操作 麻烦,气味难闻.文中采用高效液相色谱法,操作简 单,线性关系良好. 1材料与方法 1.1原料 新鲜大蒜,产自山东泰安. 1.2主要仪器 Waters600高效液相色谱仪,多功能食品加工 机,微波炉. 1.3主要试剂 蒜氨酸(纯度90%),Fluka公司. 1.4蒜氨酸溶液的配制 取蒜氨酸10mg,定容至10mL,配制成浓度为 900~g/mL的蒜氨酸溶液.再稀释成450,300,225, 180,150,90肚g/mL的标准溶液. 第一作者:硕士研究生(乔旭光为通讯作者). *国家自然科学基金(No.30270937)和国家863(No 2001AA248021)资助 收稿日期:2005—12—07,改回日期:2006—02—27 1.5蒜氨酸的液相色谱分析条件 Waters600高效液相色谱仪,C18色谱柱(250 Film×4.6mm,5.0111),Waters996检测器,检测波 长为214nFfl,v(甲醇):V(水):60:40,流速为0.8 mL/min,进样量10L. 1.6鲜蒜供试液的制备 (1)微波灭酶后大蒜样品的制备(A):称取10g 大蒜,微波灭酶5min,然后加50mL水破碎,转移至 容量瓶中并加水定容至100mL. (2)水煮灭酶后大蒜样品的制备(B):称取10g 大蒜,沸水煮10min,然后加50mL水破碎,转移至 容量瓶中并加水定容至100mL. (3)有机溶剂冷冻浸提蒜氨酸样品的制备l6J (C):参考文献[6],大蒜称取10g. (4)大蒜未经灭酶处理的样品制备(D):称取10 g大蒜,加50mL的水破碎室温下放置1d,转移至容 量瓶中并加水定容至100mL. (5)大蒜加水破碎反应30min样品的制备(E): 称取10g左右大蒜,加50mL水破碎,室温下放置 30min,然后煮沸10rain,冷却后转移至容量瓶中并 加水定容至100mL. (6)大蒜加5mmol/LPLP溶液反应30min样 品的制备(F):称取10g大蒜,加50mL的5mmol/ LPLP破碎,室温下放置30min,然后煮沸10rain, 冷却后转移至容量瓶中并加水定容至100mL. 1.7高相液相分析前处理 将制备好的供试液静置2h,取上清液离心 (10000r/rain,10min),取10mL离心上清液稀释至 100mL,滤膜过滤,然后上样分析. 2结果与分析 2.1蒜氨酸的液相色谱图 Q生蔓丝整蔓生塑(星蔓Q塑I115f F00DANDFERMENTATIONINDUS,rRIES 纯品蒜氨酸的液相色谱如图1所示,蒜氨酸的保 留时间3.717rain. 图1蒜氨酸的液相色谱图 2.2蒜氨酸的标准曲线 将浓度分别为900,450,300,225,180,150,90 /~g/mL的蒜氨酸标准溶液每个进样3次取平均值, 以峰面积为横坐标,蒜氨酸含量为纵坐标作标准曲 线,得到标准回归曲线方程为: Y=6.1299X一1.8639 式中:Y为蒜氨酸浓度(/~g/mL); X为峰面积(×10). 该回归方程的相关系数为0.999965,可见蒜氨 酸浓度在90,900~g/mL之间,浓度与峰面积的线 性关系良好. 2.3精密度,添加回收率实验 吸取同一浓度的蒜氨酸标准溶液,重复测定5 次,结果见1.准确取已知含量的样品,加入不同 浓度的对照品,按上述色谱条件测得的回收率见表 2 表1蒜氨酸测定的精密度实验 纛加入量.测定次数喜暑回收率 . mL一1旭?LI . mL一.mL一1/oL /旭?mL'/旭?mL'/旭.mL' 和回收率均较高. 2.4蒜氨酸含量的测定 2.4.13种灭酶方法测得的蒜氨酸含量 3种灭酶方法提取的蒜氨酸的液相色谱分析如 图2,图3和图4所示,含量见表3. 2.004.006.008.0010.00 时间/min 图2微波灭酶提取的蒜氨酸的液相色谱(A) 1.50 1.00 0..50 0.00 2.004.006.008.0010.00 时间/min 图3水煮灭酶提取的蒜氨酸的液相色谱(B) 0.20 《 0.00 2.004.006.008.0010.00 时间/rain 图4有机溶剂冷冻浸提蒜氨酸的液相色谱(C) 表33种灭酶方法测得的蒜氯酸含量 2.4.2大蒜破碎放置1d后剩余蒜氨酸的含量 从表1和表2可以看出,这种测定方法的精密度大蒜破碎放置1d后 ,上样进行液相分析,仍可 116lll6VOI.32NO.4(Total220) 检测到蒜氨酸的残留,如图5所示,剩余蒜氨酸的含 量为0.189%. lJ00 0.50 0.00 时间/rain 图5大蒜破碎反应1d后的液相色谱图(D) 2.4.3加5mmol/LPLP对蒜氨酸转化率的影响 由图6知,只加水的破碎大蒜体系中存在大量的 蒜氨酸,含量为0.193%;由图7知,添加5retool/L PLP的破碎大蒜体系中蒜氨酸的含量较图6要少, 蒜氨酸的含量为0.103%. 三0.50 0.00 l_O02.O03.O04.O05.O06.O0 时问/rain 图6大蒜破碎后反应30min的液相色谱(E) lJ50 lJ00 《0.50 n舯 2.004.006.008.0010.00 时问/rain 图7加PLP反应30min的液相色谱(F) 3结论 3.1大蒜中的蒜氨酸的含量 微波,水煮,有机溶剂3种灭酶方法测得的蒜氨 酸的含量分别为0.823%,0.730%,0.156%(鲜重), 可见微波灭酶的效果最好,蒜氨酸的含量为2.39% (干重,鲜蒜含水量65.1%).水煮灭酶法提取的蒜 墨露蕊 氨酸的含量低于微波灭酶法,可能是由于水煮过程不 能快速彻底灭酶而导致一部分的蒜氨酸被酶催化生 成大蒜素.而有机溶剂冷冻浸提因为大蒜未破碎,所 以提取率低,可采用多次冷冻浸提提高蒜氨酸的提取 率. 3.2大蒜破碎后剩余蒜氨酸的含量 大蒜破碎后,体系中的蒜氨酸不能全部转化生成 大蒜素,剩余的蒜氨酸含量占到总含量的23.0%(以 微波灭酶提取的蒜氨酸总量计).对于蒜氨酸的未完 全反应,可能是由于大蒜中的催化蒜氨酸生成大蒜素 的蒜氨酸酶在反应的过程中受到了抑制,失去了进一 步催化蒜氨酸的能力. 3.3磷酸吡哆醛对蒜氨酸转化率的影响 磷酸吡哆醛可以有效的提高蒜氨酸的转化率,通 过添加5mmol/L磷酸吡哆醛可以将蒜氨酸的剩余 率由23.5%降低到12.5%.说明作为蒜氨酸酶的辅 酶,磷酸吡哆醛可以在大蒜的破碎体系中保持蒜氨酸 酶的稳定性,从而提高蒜氨酸的转化率. 参考文献 1钱岳晟,徐定海,王崇行,等.大蒜对高血压患者血脂,血 糖,血压作用的临床研究[J].浙江中医学院,1999,24 (4):45,46 2EllmoreGS,FeldbergRS.Allinlyaselocalizationinbundle sheathsofthegarlicclove(alliumsativun)[J].AmeriJournal ofBotany,1994,81(1):89,94 3张维勤.大蒜及制剂中大蒜辣素的含量测定[J].中草药, 1985,16(10):17 4何照范,张迪青.保健食品化学及其检测技术[M].北京: 中国轻工业出版社,1999.141,142 5TheUnitedStatePharmacopoeialConyention.TheUnited StatePharmacopoeia(Asian).25th.ed.Rockville,2002 6JaneELancaster,KathleenEKelly.QuantitativeAnalysisof theS-alk(en)yl—L—cysteineSulphoxidesinOnion(Allium— cepaL.)[J].JSciFoodAgric,1983,34:1229,1235 7常军民.HPLC测定不同产地大蒜中蒜氨酸的含量[J]. 中成药,2004,26(12):1025,1027 8黄雪松,温丽儿,宴日安.反相高压液相色谱法测定鲜蒜 中的蒜氨酸[J].食品与发酵工业,2005,31(5):106,109 9常军民,陈坚,张丽静.HPLC法测定小鼠血浆中蒜氨 酸的浓度[J].中成药,2003,25(3):230,231 (下转第121页) 堡蔓丝查蔓璺塑星蔓塑J117 检测方法适用于番茄饮料中番茄红素的提取和测定, 为果汁中番茄红素的测定提供了有效的分析方法. (2)应用高效液相色谱方法定性,定量分析了5 种番茄饮料中的类胡萝b素,发现被测样品中的类胡 萝b素主要为番茄红素,番茄红素含量基本达到或高 于国家标准的要求. (3)番茄红素主要存在于番茄果肉中,在通常的 室温或冷藏及光照保存条件下番茄饮料中番茄红素 稳定性良好. 2 3 参考文献 Wilhelms.HelmutS.Lycopene:ABiologicallyimportant carotenoidforhumans[J].ArchivesofBiochemistryand Biophysics,1996,336(1):1,9 NorrishAE,JacksonRT.Prostatecanceranddietary carotenoids[J].AmericanJournalofEpidemiology,2000, 151(2):119,123 中国标准出版社第一编辑室.中国食品工业标准汇编 [M].北京:中国标准出版社,2003.GB10474,89,353, 356 4GranadoF,OlmedillaB,BlancoI.Carotenoidcompositionin rawandcookedSpanishvegetables[J].AgriculturalFood Chemistry,1992,40(11):2135,2140 5CarftNE,StephenA,WiseJ~ephH.Optimizationofan isocratichigh-performanceliquidchromatographicseparation ofcarotenoids[J].JournalChromatography,1992,589:171 —— 176 6RoomnsHS,HarryHS.EvaluationandvalidationofanLC methodfortheanalysisofcarotenoidsinvegetablesandfruit [J].FoodChemistry,1997,59:599,603 7KoningsEJM,ScottKJ,HartDJ.Furtherobservations onproblemsassociatedwiththeanalysisofcarotenoidsby HPLG2:Columntemperature[J].FoodChemistry,1993, 47:403,405 8LinCH,ChenBH.Determinationofcarotenoidsintomato juicebyliquidchromatography[J].JournalofChromato— graphyA,2003,1012:103,109 StudyonAnalysisandStabilityofLycopenefromTomatoJuice ZhuLeiChenMinLiHeZhangYunling (1CollegeofFoodScienceandNutritionalEngineering,ChinaAgriculturalUniversity,Beijing100083,China) ABSTRACTTheextractandanalysismethodsoftheLycopeneintomatojuicewerestudiedbyusingfivetomato juicesamplesfromthemarket.Thebestextractmethodwastousepetroleumastheextractionsolutionandaided byultrasound.andtherecoveryis91%.ThequantitativeanalysisofLycopenewasdiscussedandSpectropho— tometerandHPLCmethodswerecomparedMoreover,thestabilitystudyresultshowedthatLycopenewasvery stableintomatojuicebutquiteunstableinacetonesolutionunderUV. Keyslycopene,tomatojuice,HPLC (上接第117页) DeterminationofAlliininGarlicbyHighPerformance LiquidChromatography WangWeiQiaoXuguangLiFuwei2 1(CollegeofFoodScienceandEngineering,ShandongAgricultureUniversity,Taian271018,China) 2(TestCenter,ShandongAcademyofScience,Jinan250014,China) ABSTRACTThequalitativeandquantitativedeterminationofalliiningarlicwasstudiedbyhighperfclrmanceliq— uidchromatography.Thealliinwasextracledbythereinactivatedenzymemethods,includingmicrowave,boiled water,chilledorganicsolvent.Theretentiontimeofalliinis3.717min.Thealliincontentofgarlicwas0.823%, 0.730%.0.156%.Theresidualquantityofalliinonedaylateris23.0%.Thetransformationratioofalliinwas improvedbytheadditionofpyridoxinephosphate(PLP). Keywordsgarlic,alliin,highperformanceliquidchromatography,content 2oo6年第32卷第4期(总第220期)f121
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