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生物素测试剂盒操作流程

2019-07-05 8页 doc 39KB 53阅读

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生物素测试剂盒操作流程维生素B7(生物素)检测试剂盒实验操作流程 一、实验前准备工作 1、灭菌(在做实验前,至少提前两个小时以上灭菌) 实验器材名称 规格 数量 黄色吸头 20-200ul 200个 蓝色吸头 100-1000ul 200个 带塞可离心试管 50ml 至少是当次检测样品数量 离心管 1.5-2.0ml 100个 注射器   至少比当次检测样品数量多2个       如果有一次性无菌注射器则不需要灭菌注射器 没有枪头盒时用其他器皿装枪头一起灭菌(如烧杯,灭菌时放入枪头后用报纸...
生物素测试剂盒操作流程
维生素B7(生物素)检测试剂盒实验操作 一、实验前准备工作 1、灭菌(在做实验前,至少提前两个小时以上灭菌) 实验器材名称 规格 数量 黄色吸头 20-200ul 200个 蓝色吸头 100-1000ul 200个 带塞可离心试管 50ml 至少是当次检测样品数量 离心管 1.5-2.0ml 100个 注射器   至少比当次检测样品数量多2个       如果有一次性无菌注射器则不需要灭菌注射器 没有枪头盒时用其他器皿装枪头一起灭菌(如烧杯,灭菌时放入枪头后用报纸把烧杯口封起来),同时带两把小镊子,做实验时取枪头用。 2、配制溶液 (1)准备10mlHCL溶液:1.0mol/l (2)配制氢氧化钠溶液:1mol/l a)称取0.4 g 氢氧化钠 b)用10 ml双蒸水或去离子水充分溶解 注:用带橡胶塞的玻璃瓶储存。 3、实验过程中需要的其他设备及器材: 无菌工作台 酶标仪(540nm或630nm) 37℃黑暗条件下的培养箱 95℃水浴锅(实验前需要提前加热到95℃) 振荡器 pH测量仪或pH试纸 双蒸水 0.2um无菌滤膜 酒精棉 二、样品处理 1、称取1g奶粉样品至一个50ml无菌试管中,加入40ml无菌水摇匀,用HCL或NaOH调整pH值到8.0 +/- 0.2,充分混匀; 2、在95℃水浴中提取30分钟,期间所有样品试管需每隔5分钟振荡一次,并一直保持试管塞紧闭 3、迅速冷却至室温(即把样品试管放进水里,保证试管塞紧闭) 从下面这一步开始需要在无菌工作台进行 4、分别取1ml样品用0.2um无菌滤膜过滤至1.5~2.0ml无菌试管中 5、根据样品中生物素含量用试剂盒中提供的无菌水进一步稀释样品,稀释后的样品即可用于检测。 样品稀释倍数计算如下: 例如:固体样品标注浓度为80ug/100g 用该浓度除以2 计算:    80 μg ÷ 0.24 μg  =333 → 结果为稀释倍数大约为300 → 1 :300 稀释 稀释步骤: a) 1 :9(100ul样品提取溶液 + 900ul试剂盒中的无菌水), b) 1 :9(100ul a液 + 900ul试剂盒中的无菌水), c) 1 :2(200ul b液+ 400ul试剂盒中的无菌水) 注:每一步稀释都需要充分混匀后再做下一步稀释,提取稀释液需立即使用。 三、检测过程 1、配制标准品 装有无菌水的瓶子:推开蓝色帽,沿着玻璃边缘垂直向上拉开,丢弃。 标准品必须在试验之前新鲜制备。 -打开生物素标准品瓶,取出盖子。丢掉盖子和红色塞子 -加入x ml无菌水,至标准品瓶中。充分溶解标准品,即配成标准品浓缩液。 注:x详见质控报告和标准品包装标签,每一批次所加体积会略有不同,无菌水必须是取自试剂盒中提供的。 -取6个无菌管(1.5~2.0ml)并按照下列准备标准品溶液。 标准曲线* μg/100g(ml) 无菌水 μl   标准浓缩液 μl   总体积 μl 空白:0 900 + 0 = 900 标准品1:0.08 900 + 100 = 1000 标准品2:0.24 350 + 150 = 500 标准品3:0.40 250 + 250 = 500 标准品4:0.56 150 + 350 = 500 标准品5:0.72 50 + 450 = 500             注:配制每一个标准品,都是取标准浓缩液进行稀释。 2、制备生物素培养基 注:培养基必须在试验之前新鲜制备。 —打开瓶盖用镊子从干燥剂中取出培养基,丢掉干燥剂。 -加入10ml无菌水(必须取自试剂盒中)至生物素培养基中。 -盖好培养基瓶,充分摇匀。 -在95℃水浴中加热至少5分钟,期间振荡至少2次,保证瓶子封闭。 -迅速冷却至室温(低于30℃)。 -使用0.2μm无菌滤纸过滤培养基至15ml无菌离心管中。 3、检测过程 -取出当次实验需要数量的微孔板条,并固定在板上,未使用的微孔板条立即放回原来的箔袋中,并与干燥剂一起重新封好,储存在2-8℃条件下。 -用移液枪取150μl生物素培养基至微孔中 -用移液枪取150μl标准品或样品至指定的微孔中 -用粘合箔盖住微孔条或微孔:用手或压舌板将粘合箔平压,使其充分封闭微孔板条。 注意:保证粘合箔和微孔的封闭性,特别注意微孔的边缘部分。 -在37℃黑暗条件下(可用孵育器)孵育44~48小时。 注:37℃孵育不能超过48小时。 以两次平行、两个样品为例,取两条微孔板条,每孔加样如下: 150ul生物素培养基+150ul无菌水 150ul生物素培养基+150ul无菌水 150ul生物素培养基+150ul标准品1 150ul生物素培养基+150ul标准品1 150ul生物素培养基+150ul标准品2 150ul生物素培养基+150ul标准品2 150ul生物素培养基+150ul标准品3 150ul生物素培养基+150ul标准品3 150ul生物素培养基+150ul标准品4 150ul生物素培养基+150ul标准品4 150ul生物素培养基+150ul标准品5 150ul生物素培养基+150ul标准品5 150ul生物素培养基+150ul样品1(稀释后) 150ul生物素培养基+150ul样品1(稀释后) 150ul生物素培养基+150ul样品2(稀释后) 150ul生物素培养基+150ul样品2(稀释后)     4、读取数据 -再次向下挤压粘合箔,将微孔板向上放置在桌面上,在桌面上来回振荡,使微生物溶解在培养基中 -从对角开始小心揭去粘合箔,从左边开始进行; -微孔液体表面有泡沫时可以用移液枪头去除 -用酶标仪630nm(或540nm)条件下读取浑浊度 四、结果计算 推荐在计算结果时使用专业计算软件。并使用4参数计算进行结果计算。 判断检测结果有效: -OD空白值 < OD标准1 -OD标准5  > 0.6 OD 从标准曲线上读取的浓度×稀释倍数 样品中生物素含量    =  ──────────────────── (μg/100ml)                  样品总量 g(ml) (μg/100g) 注:稀释倍数为样品处理过程中所计算的整数倍,不包括提取过程中的40倍,这个倍数已经在曲线中考虑进去。 例如: 样品重量:                1 g 样品提取稀释倍数:        1:40(不需要被考虑进去) 其它稀释倍数:            1:300(必须考虑) 从标准曲线中读取浓度值:  0.24 μg /100 g(ml) 0.24 ×300 / 1 = 128 μg / 100 g(ml) 五、实验注意事项 1、试剂盒应存放在2-8℃条件下。 2、微孔板操作时使用的必须是无菌样品提取液或稀释液,并且样品稀释时需要使用盒中提供的无菌水。 3、样品提取和稀释必须在无菌条件下进行。 4、检测培养基有可能刺激眼睛、皮肤和黏膜。 5、完成试验后须根据规章处理检测仪器(如使用高压灭菌锅)。
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