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Fmoc固相合成法合成黑色素细胞刺激素(MSH)的工艺研究

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Fmoc固相合成法合成黑色素细胞刺激素(MSH)的工艺研究Fmoc固相合成法合成黑色素细胞刺激素(MSH)的工艺研究 Fmoc固相合成法合成黑色素细胞刺激素(MSH)的工艺研究 [字体:大 中 小] 【关键词】 固相合成;肽类;MSH;芴甲氧羰基 【Abstract】 AIM: To study the process and influencing factors of synthesizing the melanocyte stimulating hormone(MSH) peptide by Fmoc solidphase synthesis. METHODS: Wit...
Fmoc固相合成法合成黑色素细胞刺激素(MSH)的工艺研究
Fmoc固相合成法合成黑色素细胞刺激素(MSH)的工艺研究 Fmoc固相合成法合成黑色素细胞刺激素(MSH)的工艺研究 [字体:大 中 小] 【关键词】 固相合成;肽类;MSH;芴甲氧羰基 【Abstract】 AIM: To study the process and influencing factors of synthesizing the melanocyte stimulating hormone(MSH) peptide by Fmoc solidphase synthesis. METHODS: With Fmoc to protect the αamino acid, TBTU/HOBT/DIEA were used as coupling reagents to synthesize the peptide of MSH. The synthesized peptide was purified by the chromatograph and identified by mass spectrograph. RESULTS: The peptide yield was 63%.The synthesized peptide purity reached to 98.67% after bEing purified by RPHPLC. The molecular mass of the synthesized peptide was 1663.88 ku by MALDIMS and it was consistent with the theoretic molecular mass of 1664.08 ku. CONCLUTION: This method of synthesis is rapid,simple and effective for the peptide MSH, and its fit for the largescale production. 【Keywords】 solidphase synthesis; peptides; MSH; Fmoc 【摘要】 目的: 研究 9芴甲氧羰基(Fmoc)固相合成法合成黑色素细胞 影响 因素. 方法 : 采用Fmoc保护α氨基,以刺激素(MSH)工艺的步骤及其 TBTU/HOBT/DIEA为缩合剂合成MSH. 用色谱仪和质谱仪对合成的多肽进行纯化、 鉴定. 结果: 多肽合成的得率可达63%,经反相高效液相色谱仪(RPHPLC)对 合成的多肽进行纯化后可得纯度为98.67%的目标肽. 通过基质辅助激光解吸附 电离飞行质谱仪(MALDIMS)检测所合成多肽的分子质量为1663.88 ku,与其 理论 分子质量1664.08 ku相符. 结论: 该合成法具有快捷、简便、高效地合 成多肽MSH的特点,适合大批量生产. 【关键词】 固相合成;肽类;MSH;芴甲氧羰基 0引言 多肽作为生物体内的重要组成部分之一,在体内各脏器中有许多复杂而特 殊的生理活性,1,. 黑色素细胞刺激素(MSH)是由13个氨基酸组成的一种内源 性的神经免疫调节肽,可抑制发热与主要类型的实验性炎症. 固相法作为多肽 合成领域的一个重大突破在合成多肽MSH中具有快速、简便、高效等优点,2,, 但需要对不参与反应的氨基加以保护,同时氨基酸的侧链上的活性基团也要给 予保护. 保护基的选择既要保证侧链基团不参与反应,又要保证在肽链合成过 程中不受破坏,同时还要保证在最后肽链裂解时能被除去,3,. 国内外经常采 用叔甲氧基(Boc)保护α氨基,却难以合成对酸不稳定的多肽. 由于本次合 成的多肽MSH中含有色氨酸,对酸不稳定. 我们旨在采用9芴甲氧羰基(Fmoc) 基团保护α氨基以合成MSH. 1和方法 1.1材料RPHPLC型高效液相色谱仪(Beckman公司);基质辅助激光解吸附电离飞行质谱仪(MALDIMS,Hewleftpackar公司);台式离心机(北京仪器六厂);台式冻干机(军事医学 科学 院四环仪器厂);Fmoc保护的氨基酸(Merck公司);1羟基苯并三氮唑(HOBT),1氧3双二甲胺羰基苯骈三氮唑四氟化硼盐(TBTU ,ABI公司);二异丙基乙胺(DIEA),三氟乙酸(TFA,Sigma公司);乙腈(Fisher公司);NN二甲基甲酰胺(DMF),二氯甲烷(DCM),异丙醇,FmocRink AmideMBHA Resin,吉尔生化(上海)有限公司,. 1.2方法 1.2.1树脂的选择根据导入反应基团的不同,可以把树脂分为氯甲基树脂、羧基树脂、氨基树脂或烯肼型树脂等,4,. 本次Fmoc固相合成的MSH的末端需要酰氨化,故需要选用一种Rink氨基树脂即Rink AmideMBHA Resin,在Rink Amide MBHA Resin中加入缩合剂TBTU/HOBT/DIEA使MSH的Val与树脂之间形成酰胺键,以此来完成氨基酸的固定. 1.2.2FmocValOH 与FmocRink AmideMBHA Resin的连接根据合成多肽的序列,将Rink AmideMBHA Resin置于已用DCM浸泡过的反应器中,加入DMF浸泡30 min左右,使其充分膨胀,然后用含200 mL/L哌啶的DMF溶液脱除树脂上的Fmoc基团,再用异丙醇洗涤树脂2次,最后用DMF洗涤树脂3次,当用50 g/L茚三酮检测呈阳性时将FmocValOH, TBTU, HOBT, DIEA及DMF配成的反应液加入到树脂中,室温下反应1.5 h,当用茚三酮检验呈阴性时再用异丙醇、DMF溶液各洗涤2次. 即完成第1个氨基酸与树脂的连接. 1.2.3接肽反应选用的接肽反应缩合剂为具有缩合效率高、反应速度快、不易发生消旋化反应的TBTU/ HOBT/DIEA的混合液,5,,反应时间约为1.5 h,每次反应后取少量树脂用茚三酮法检测,若呈阳性说明反应不完全,继续加入缩合剂,使其充分反应. 若呈阴性说明反应完全,用含200 mL/L哌啶的DMF溶液脱除新接入氨基酸的Fmoc基团以便于下一个氨基酸的羧基反应. 重复此过程至MSH中所有氨基酸全部接入. 1.2.4MSH,树脂的切割MSH合成完毕后,用N2吹干MSH树脂,将其置于反应器中,加入切割试剂(10 mL TFA,0.5 mL苯甲硫醚,0.25 mL巯基乙醇,0.5 mL水,0.75 g苯酚),室温下磁力搅拌反应3 h左右,使MSH与树脂分离,再经砂芯过滤,将滤液加入冰乙醚中析出多肽,最后经离心分离获得MSH粗品. 1.2.5MSH的纯化和质谱鉴定多肽合成过程中的各种副反应、消旋化以及脱保护的过程中由于保护基的残留、肽键的断裂、烷基化等原因会造成产品不纯. 根据目的肽的要求可采用适当的方法进行纯化. 我们选用的是具有快速、高效和较高回收率等特点的RPHPLC进行纯化,6,,采用MALDIMS鉴定所得产品. 2结果 2.1а氨基保护基团的选择及其脱除绘制Fmoc基团的脱除效果与哌啶的含量及其脱除时间关系曲线,可以看出随着哌啶含量的增加,脱除反应速度在加快,本次合成选用含200 mL/L哌啶的DMF溶液反应25 min,脱除率在99%以上,可以很好的脱除Fmoc保护基团(图1). 图19芴甲氧羰基的脱除率与哌啶含量及脱除时间的关系(略) 2.2MSH粗品的 分析 图色谱图中峰数较多,利用色谱工作站软件可知,合成的多肽粗品中,主峰物质占68%(图2). PRHPLC色谱条件: 4.6 mm×25 cm(c18,反相); 流动相中A液: 1 mL/L三氟乙酸的纯水溶液,B液: 1 mL/L三氟乙酸的乙腈溶液;梯度洗脱方式: 900 mL/L A液+100 mL/L B液在30 min内降为100 mL/L A液+900 mL/L B液, 流速: 1 mL/min; 检测波长: 215 nm. 图2MSH粗品的色谱图(略) , 1 , 2 , 下一页 2, 欢迎浏览更多首页 ? 医学论文 ? 其它医学论文文章 [字体:大 中 小] 2.3MSH粗品的质谱检测MSH粗品的质谱 分析 结果显示,质谱图中主峰显示的分子质量为1663.88 ku,与MSH的 理论 分子质量1664.08 ku接近,说明MSH粗品中含有MSH(图3). 图3MSH粗品的质谱图(略) 2.4MSH的纯化及纯化后的色谱分析在RPHPLC纯化过程中选用的离子对为三氟乙酸(TFA). 从多肽MSH纯化后的色谱分析结果可以看出,主峰面积较大,其他峰面积与主峰相比较小(图4),表明合成的粗品经RPHPLC纯化后可能会得到较纯的MSH. 2.5MSH纯化后的质谱鉴定MALDIMS分析的结果显示,实际合成的多肽分子质量为1663.88 ku,与MSH的理论分子质量1664.08 ku相差无几. 同时也可以看出,图中峰数很少,而且主峰明显,说明本次合成的MSH经色谱仪纯化后,可以除去大部分的杂质,从而得到较纯的MSH(图5). PRHPLC色谱条件: 4.6 mm×25 cm(c18,反相); 流动相中A液: 1 mL/L三氟乙酸的纯水溶液,B液: 1 mL/L三氟乙酸的乙腈溶液;梯度洗脱方式: 900 mL/L A液+100 mL/L B液,在30 min内降为100 mL/L A液+900 mL/L B液; 流速: 1 mL/min; 检测波长: 215 nm. 图4MSH纯化后的色谱图(略) 图5MSH纯化后的质谱图(略) 3讨论 用于合成多肽的树脂具有多种类型,实际合成中要根据合成多肽的特点,选择合适的树脂作为载体,由于MSH的末端需要酰氨化,所以选用Rink AmideMBHA Resin,这种树脂具有稳定的理化性质、足够多的反应位点及副反应少等优点,可以提高产物得率,降低纯化成本. 固相合成通常采用Boc和Fmoc两种策略对α氨基加以保护,7,,与Boc法相比,Fmoc法更适合合成对酸不稳定的多肽, 而且具有反应条件温和、副反应少、可以大量合成等优点. 由于本次合成的多肽MSH,其中含有的色氨酸对酸不稳定,所以要选择Fmoc基团对α氨基进行保护. DCC是多肽合成中常用的一种缩合试剂,但它往往会伴随一些副反应,这样会降低产物得率,提高纯化成本. TBTU/ HOBT/DIEA作为新型的复合型缩合试剂,是减少在肽链延伸过程中这些副反应产生的有效 方法 ,同时也具有反应快速,缩合条件温和以及产物易于纯化等特点,所以可以达到提高产物得率,降低纯化费用的目的,便于多肽MSH的产业化生产,8,. 合成多肽MSH时,在每一步反应完成后,下一个氨基酸接入之前,需要脱除Fmoc基团,通常采用哌啶的DMF溶液,其脱除效果与哌啶含量有关,200 mL/L哌啶的DMF溶液与100 mL/L哌啶的DMF溶液相比,脱除时间较短,脱除效果却更好,但当哌啶含量过大时,就会因反应过于剧烈而出现副反应,这样不利于脱除后的洗涤. 所以我们采用的是200 mL/L的DMF溶液. Fmoc固相法合成多肽MSH,首先采用RPHPLC对粗品进行分析,确定粗品分析图中主峰物质的含量并将其作为样品进行质谱分析,再采用RPHPLC对其进行纯化,可以得到98.67%的高纯度产物,最后经MALDIMS鉴定,主峰显示的分子质量为1663.88 ku,与MSH的理论分子质量1664.08 ku接近. 由于采用Fmoc基团保护а氨基,选用TBTU/HOBT/DIEA作为缩合剂,可以有效的提高MSH的合成效率. 因此,采用本合成工艺合成多肽MSH具有反应条件温和,缩合效率高以及合成成本低的特点,适合于大规模生产. 【 参考 文献 】 ,1, 杨凌春,郭雪峰, 齐传民,等. 小分子多肽合成方法的改进,J,. 北京师范大学学报( 自然 科学 版),2003, 39(1):97. ,2, 韩香,顾军. 固相法在多肽合成领域的 应用 ,J,. 药学进展,2002,28(1):10. ,3, Ramage R, Jiang L, Kim YD, et al. Comparative studies of Nsc and Fmoc as N(alpha)protecting groups for SPPS,J,. Pept Sci, 1999,5(4):195-200. ,4, Zikos C. comparative evaluation of four trityltype amidomethy polystyrene resins in Fmoc solid phase peptide synthesis,J,. Pept sci, 2003,9(7):419-429. ,5, Li P, Xu JC. Studies of Novel and Highly Efficient Peptide Coupling Pegents,J,. J Graduat School Chin Acad Sci, 2004,21(1):125. ,6, 师治贤,王俊德. 生物大分子的液相色谱分离和制备,M,. 2版. 北京: 科学出版社,1996:73-200. ,7, 陶慰孙,李维,姜涌明. 蛋白质分子基础,M,. 2版. 北京:高等 教育 出版社,1995: 175-180. ,8, 李根, 李崇熙, 邢其毅,等. 多肽合成中羧基活化方法的一些新进展 ,J,. 有机化学,1989, 9(5): 396-401. , 上一页 , 1 , 2 1, 欢迎浏览更多首页 ? 医学论文 ? 其它医学论文文章
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